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本试剂盒采用特有配方技术，大大增强了糖原染色效果，性能稳定，特异性强，操作简捷。


糖原染色是病理学中常规的染色方法之一，McManus在1964年最先使用高碘酸-雪夫技术显示黏蛋白，该法常用来显示糖原和其他多糖，该染色试剂盒不仅能够显示糖原，还能显示中性黏液性物质和某些酸性物质以及软骨、垂体、霉菌、真菌、色素、淀粉样物质、基底膜等。过碘酸(又称高碘酸)是一种强氧化剂，它能氧化糖类及有关物质中1，2-乙二醇基，使之变为二醛，醛与schiff试剂能结合成一种品红化合物，产生紫红色。由于高碘酸还可氧化细胞内其他物质，使用时应注意选择好高碘酸浓度和氧化时间，使氧化控制在既能把乙二醇基氧化成醛基又不至于过氧化，这是很关键的步骤。

组分	4×50mL	4×100mL	保存
试剂(A):过碘酸溶液	50mL	100mL	4℃，避光
试剂(B)：Schiff Reagent	50mL	100mL	4℃，避光
试剂(C)：苏木素染色液	50mL	100mL	RT，避光
试剂(D)酸性乙醇分化液	50mL	100mL	RT

保存：2～8℃，避光，有效期6个月。

1. 10%福尔马林固定液
   
2. 蒸馏水
   
3. 系列乙醇

1. 切片脱蜡应尽量干净，否则影响染色效果。
   
2. 过碘酸氧化时间不宜过久，氧化时的温度以18～22℃最佳。
   
3. 过碘酸溶液和Schiff Reagent应置于4℃密闭保存，使用时避免接触过多阳光和空气。使用前，最好提前30min取出恢复到在室温，避光暗处使用。
   
4. 酸性乙醇分化液应经常更换新液，其分化时间应该根据切片厚薄，组织的类别和分化液的新旧而定，另外分化后自来水冲洗时间应该足够。
   
5. 在过碘酸溶液和Schiff Reagent中作用时间非常重要，该根据切片厚薄，组织的类别等决定。
   
6. 本染色液常用于常规组织切片染色。
   
7. 冷冻切片染色时间尽量要短。

1. 常规固定，常采用10%福尔马林，常规脱水包埋。
   
2. 石蜡切片脱蜡入蒸馏水；冰冻切片直接入蒸馏水。
   
3. 自来水冲洗2～3min，再用蒸馏水浸洗2次。
   
4. 入过碘酸溶液，室温放置5～8min，一般不宜超过10min。
   
5. 自来水冲洗1次，再用蒸馏水浸洗2次。
   
6. 入Schiff Reagent，置于室温阴暗处浸染10～20min。
   
7. 自来水冲洗10min。
   
8. 入苏木素染色液，染细胞核1～2min。
   
9. 酸性乙醇分化液分化2-5s。
   
10. 自来水冲洗10～15min，更换蒸馏水清洗，使其返蓝。
    
11. 逐级常规乙醇脱水。二甲苯透明，中性树胶封固。

反应阳性物质	红色或紫红色
细胞核	蓝色
细胞质	深浅不一的红色

注：颜色深浅很大程度上取决于样品在过碘酸溶液和Schiff Reagent中作用时间的长短。

1. 取淀粉酶1g溶解于PBS(pH5.3)100mL，处理30～60min，与其他切片共同入过碘酸溶液。结果为阴性。
   
2. (备选方案)取唾液片(过滤后用)处理30～60min，与其他切片共同入过碘酸溶液。结果应为阴性。
   
3. (备选方案)如果对照片采用其自身样本，对照片不经过碘酸溶液这一步，直接入Schiff Reagent。结果应为阴性。

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