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DAPI染色液是适用于常见细胞和组织细胞核染色的染色液，本制品是DAPI染色液的浓缩储存液，稀释后使用，一般推荐工作浓度为0.5～10μg/mL，用于固定细胞或组织的细胞核染色。

DAPI即2-(4-Amidinophenyl)-6-indolecarbamidine dihydrochloride，也称DAPI dihydrochloride，分子式为C16H15N5·2HCl，分子量为350.25，是可以穿透细胞膜的蓝色荧光染料，和双链DNA结合后可以产生比DAPI自身强20多倍的荧光，灵敏度高于EB。DAPI染色常用于细胞凋亡检测，染色后用荧光显微镜观察或流式细胞仪检测，DAPI也常用于普通的细胞核染色以及某些特定情况下的双链DNA染色，DAPI的最大激发波长为340nm，最大发射波长为488nm，DAPI和双链DNA结合后，最大激发波长为364nm，最大发射波长为454nm。

• 荧光显微镜、微量移液器
  
• 蒸馏水、PBS或生理盐水

• DAPI染色液(1mg/mL)应稀释至合适的浓度后使用。
  
• 荧光染料都存在淬灭的问题，建议染色后尽快检测。
  
• 为减缓荧光淬灭，可以使用抗荧光淬灭封片液。
  
• 避免反复冻融，否则容易失效。
  
• DAPI对人体有一定刺激性，请注意适当防护。
  
• 为了您的安全和健康，请穿实验服并戴一次性手套操作。

• 根据实验具体要求，用无菌去离子水稀释到自己所需浓度，即为DAPI染色工作液；细胞核染色时，一般推荐工作浓度为0.5～10μg/mL。
  
• 对于细胞或组织样品，固定后冲洗去除固定剂，如需要进行免疫荧光染色，则先进行免疫荧光染色，染色完毕后再按后续步骤进行DAPI染色，如果不需要进行其它染色，则直接进行后续的DAPI染色；对于贴壁细胞或组织切片，加入少量DAPI染色工作液，覆盖住样品即可；对于悬浮细胞，至少加入待染色样品3倍体积以上的DAPI染色工作液，充分混匀。
  
• 室温放置5～8min。轻轻吸除DAPI染色工作液。
  
• 用无菌的PBS或生理盐水清洗2～3次，每次3～5min。
  
• 直接在荧光显微镜下观察或封片后荧光显微镜下观察。