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糖原染色是病理学中常规的染色方法之一，McManus在1946年最先使用高碘酸-雪夫技术显示黏蛋白，该法常用来显示糖原和其他多糖，该技术不仅能显示糖原，还能显示中性黏液性物质和某些酸性物质以及软骨、垂体、霉菌、真菌、色素、淀粉样物质、基底膜等。过碘酸(又称高碘酸)是一种强氧化剂，它能氧化糖类及有关物质中的1，2-乙二醇基，使之变为二醛，醛与Schiff 试剂能结合成一种品红化合物，产生紫红色。由于高碘酸还可氧化细胞内其他物质，使用时应注意选择好高碘酸浓度和氧化时间，使氧化控制在既能把乙二醇基氧化成醛基又不至于过氧化，这是很关键的步骤。

本公司糖原PAS染色液(真菌专用)利用真菌含有多糖，过碘酸氧化真菌壁上的多糖而暴露出醛基，醛基与无色Schiff 结合呈现红色。

产品特点：
?染色稳定。
?特异性强。
? 操作简捷，仅需半小时。
?浓度低过碘酸更适用于对真菌染色，无盐酸乙醇分化液分化步骤。

试剂盒组成：

成分	规格
溶液A	50ml
溶液B	50ml
溶液C	50ml
说明书	1份

储存条件：低温运输，溶液A和溶液B需4℃避光保存，溶液C可室温避光密闭保存，有效期6个月。

使用方法：(以下步骤仅供参考)
1．常规固定(常采用10%福尔马林)，常规脱水包埋。
2．细胞涂片入蒸馏水(无需包埋、脱蜡)或组织切片脱蜡入蒸馏水。
3．入溶液A(过碘酸溶液)中，室温氧化10min。
4．自来水冲洗2次，蒸馏水浸洗2次。
5．入溶液B(Schiff Reagent)并加盖，置于室温阴暗处浸染10～20min。
6．溶液C滴洗2次，每次2min。
7．流水冲洗2min。
8．逐级常规乙醇脱水。二甲苯透明，中性树胶封固。

染色结果：

真菌	紫红色
细胞质	深浅不一的红色

备注：颜色深浅很大程度上取决于样品在过碘酸溶液和Schiff Reagent中作用时间的长短。

阴性对照(可选)：
1．取淀粉酶1g 溶解于PBS(pH5.3)100mL，处理30～60min，与其他样本共同入溶液A。结果应为阴性。
2．(备选方案)取唾液片(过滤后用)处理30～60min，与其他样本共同入溶液A。结果应为阴性。
3．(备选方案)如果对照片采用其自身样本，对照片不经溶液A这一步，直接入溶液B。结果应为阴性。

注意事项：
1．溶液A(过碘酸)氧化时间不宜过久，氧化时的温度以18～22℃最佳。
2．溶液A、溶液B使用时避免接触过多的阳光和空气，使用前最好提前30min取出恢复至室温，避光暗处使用。
3．如常规切片建议用糖原PAS染色液，因为其过碘酸溶液和苏木素溶液浓度都相对高。
4．为了您的安全和健康，请穿实验服并戴一次性手套操作。
相关搜索：糖原PAS染色液(真菌专用)，Glycogen PAS stain (for fungi)