产品货号：
QN4097
中文名称：
交联琼脂糖凝胶CL-2B
英文名称：
Sepharose CL-2B
产品规格：
100ml|500ml
发货周期：
1～3天
产品价格：
询价
本产品具有很高的化学稳定性、高流速、较好的机械性能、可多次重复使用等特点，非特异性吸附低，回收率高，可用有机溶剂及1~2mol/L的NaOH在位清洗，适用于工业规模生产，广泛用于生物制药和生物工程下游蛋白质、核酸及多肽的凝胶色谱纯化。
琼脂糖凝胶CL-2B是在琼脂糖凝胶2B的基础上通过交联使微球的刚性增强，理化性能提高，有利用于工业生产。该介质用于生物大分子的凝胶层析。本品为白色球状凝胶，无嗅、无味、无肉眼可见杂质。
理化指标：
*检测条件：层析柱10mm×300mm *柱床高15cm，25℃，流动相为0.1mol/L NaCl。
贮存：产品应密封贮存在4～25℃（保存溶液为20%乙醇），通风、干燥、清洁的地方，不能冷冻，保质期5年。用过的柱子贮存在4℃（20%乙醇）。
注意事项：本品应避免与氧化剂接触，避免长时间暴露在空气中。
使用过程：
1．装柱
凝胶过滤介质的使用对装柱的要求较高，为了保证分离效果，一般通过柱子上加一个装柱器来使分离柱装满凝胶，或采用带有轴向加压装置的柱子。凝胶柱床一般高于60cm。装柱效果可用染料或丙酮-水溶液进行检验。
以下过程为通用介质装填过程。若为带有轴向加压装置的柱子，可在柱床稳定后将柱床压紧，接好管路。
① 让所有的材料和试剂达到室温。配制缓冲液。凝胶层析上样、平衡和洗脱只用一种低盐浓度的缓冲液。
② 选择一根一定直径的柱子，长约30～60cm,根据柱子大小取所需量的凝胶（约为柱床体积的1.15倍），清洗掉20%乙醇，抽干，用缓冲液（按凝胶：缓冲液=3：1的比例）配成匀浆。
③ 将柱内及柱子底端用水或缓冲液润湿并保持一小段液位（液面略高于滤膜），务必使底端无气泡。
④ 用玻璃棒引导匀浆沿着柱内壁一次性倒入柱内，注意勿使产生气泡。打开柱子出液口，使凝胶在柱内自由沉降，连结好柱子顶端柱头。
⑤ 打开蠕动泵，让缓冲液用使用时流速的1.33倍的流速流过，使柱床稳定。用缓冲液平衡柱子，到柱床稳定。
⑥ 最好用一个装柱器辅助装柱。装完后柱床上端轻轻刮平，上好柱头。
2．平衡
让缓冲液以一定流速流过柱子，到流出液电导和pH不变。
3．上样
上样之前，样品必须去除色素，否则色素会被吸附到填料上，影响填料的正常使用。
① 样品用缓冲液配制，浑浊的样品要离心和过滤后上样。含盐量过大、浓度过小的样品要先做处理，再上样。
② 介质对样品组分的分离是按组分分子量大小进行的，分子量大的先流出来。
③ 上样体积约为柱体积的1～2%，越小分离越好。
4．洗脱
用缓冲液洗脱，洗脱中保持流速、缓冲液组成不变。
5．再生
一般用缓冲液洗到平衡，可再次使用。
6．注意
在装柱、使用和保存柱子的时候，始终要避免柱子流干气泡进入。
若有失活蛋白质或脂类物质在再生时洗不掉，可用在位清洗（CIP）除去。
7．在位清洗
① 对于以离子键结合上去的蛋白，可以用2M Nacl去除。
② 对沉淀蛋白、对以疏水性结合的蛋白或脂类，可用1M NaOH去除。
③ 对强疏水性结合的蛋白、脂类等，用4~10倍柱体积的70%乙醇或30%异丙醇清洗，但要注意有机溶剂的浓度以梯度的方式逐渐增加，否则容易产生气泡。
清洗完毕后，用至少3倍缓冲液平衡柱子。
8．注意
在装柱、使用和保存柱子的时候，要避免柱子流干气泡进入。
9．去热源
用0.5M的氢氧化钠清洗柱子5～6小时或用0.1M的氢氧化钠24小时。或用以下方法步骤去除：
① 2倍柱体积的70%乙醇；
② 2倍柱体积50mM Tris-Hcl pH7.5；
③ 1倍柱体积4M尿素；
④ 3倍柱体积的Tris缓冲液+0.1M NaCl；
以上缓冲液都在无热源的双蒸水中配制。
10．消毒
用0.5～1M NaOH室温下洗8～10倍柱体积，初始缓冲液平衡柱子。
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琼脂糖凝胶CL-2B是在琼脂糖凝胶2B的基础上通过交联使微球的刚性增强，理化性能提高，有利用于工业生产。该介质用于生物大分子的凝胶层析。本品为白色球状凝胶，无嗅、无味、无肉眼可见杂质。
理化指标：
| 项目 | 指标 |
| 基质 | 2%琼脂糖凝胶 |
| 排阻极限 | 70000~40×106(球蛋白) |
| 形状 | 球形 |
| 粒径 | 60~200μm |
| 最高流速 | 15cm/h* |
| 耐压 | 0.025 MPa |
| pH值稳定性 | 3～13(长时间)，2～14(短时间，在位清洗) |
| 化学稳定性 | 可耐8mol/L尿素、6mol/L盐酸胍； 可耐有机溶剂，如乙醇、DMF、THF、DMS、CH3Cl、 丙酮、二甲基甲酰胺、二氯乙烷、吡啶、乙腈 |
*检测条件：层析柱10mm×300mm *柱床高15cm，25℃，流动相为0.1mol/L NaCl。
贮存：产品应密封贮存在4～25℃（保存溶液为20%乙醇），通风、干燥、清洁的地方，不能冷冻，保质期5年。用过的柱子贮存在4℃（20%乙醇）。
注意事项：本品应避免与氧化剂接触，避免长时间暴露在空气中。
使用过程：
1．装柱
凝胶过滤介质的使用对装柱的要求较高，为了保证分离效果，一般通过柱子上加一个装柱器来使分离柱装满凝胶，或采用带有轴向加压装置的柱子。凝胶柱床一般高于60cm。装柱效果可用染料或丙酮-水溶液进行检验。
以下过程为通用介质装填过程。若为带有轴向加压装置的柱子，可在柱床稳定后将柱床压紧，接好管路。
① 让所有的材料和试剂达到室温。配制缓冲液。凝胶层析上样、平衡和洗脱只用一种低盐浓度的缓冲液。
② 选择一根一定直径的柱子，长约30～60cm,根据柱子大小取所需量的凝胶（约为柱床体积的1.15倍），清洗掉20%乙醇，抽干，用缓冲液（按凝胶：缓冲液=3：1的比例）配成匀浆。
③ 将柱内及柱子底端用水或缓冲液润湿并保持一小段液位（液面略高于滤膜），务必使底端无气泡。
④ 用玻璃棒引导匀浆沿着柱内壁一次性倒入柱内，注意勿使产生气泡。打开柱子出液口，使凝胶在柱内自由沉降，连结好柱子顶端柱头。
⑤ 打开蠕动泵，让缓冲液用使用时流速的1.33倍的流速流过，使柱床稳定。用缓冲液平衡柱子，到柱床稳定。
⑥ 最好用一个装柱器辅助装柱。装完后柱床上端轻轻刮平，上好柱头。
2．平衡
让缓冲液以一定流速流过柱子，到流出液电导和pH不变。
3．上样
上样之前，样品必须去除色素，否则色素会被吸附到填料上，影响填料的正常使用。
① 样品用缓冲液配制，浑浊的样品要离心和过滤后上样。含盐量过大、浓度过小的样品要先做处理，再上样。
② 介质对样品组分的分离是按组分分子量大小进行的，分子量大的先流出来。
③ 上样体积约为柱体积的1～2%，越小分离越好。
4．洗脱
用缓冲液洗脱，洗脱中保持流速、缓冲液组成不变。
5．再生
一般用缓冲液洗到平衡，可再次使用。
6．注意
在装柱、使用和保存柱子的时候，始终要避免柱子流干气泡进入。
若有失活蛋白质或脂类物质在再生时洗不掉，可用在位清洗（CIP）除去。
7．在位清洗
① 对于以离子键结合上去的蛋白，可以用2M Nacl去除。
② 对沉淀蛋白、对以疏水性结合的蛋白或脂类，可用1M NaOH去除。
③ 对强疏水性结合的蛋白、脂类等，用4~10倍柱体积的70%乙醇或30%异丙醇清洗，但要注意有机溶剂的浓度以梯度的方式逐渐增加，否则容易产生气泡。
清洗完毕后，用至少3倍缓冲液平衡柱子。
8．注意
在装柱、使用和保存柱子的时候，要避免柱子流干气泡进入。
9．去热源
用0.5M的氢氧化钠清洗柱子5～6小时或用0.1M的氢氧化钠24小时。或用以下方法步骤去除：
① 2倍柱体积的70%乙醇；
② 2倍柱体积50mM Tris-Hcl pH7.5；
③ 1倍柱体积4M尿素；
④ 3倍柱体积的Tris缓冲液+0.1M NaCl；
以上缓冲液都在无热源的双蒸水中配制。
10．消毒
用0.5～1M NaOH室温下洗8～10倍柱体积，初始缓冲液平衡柱子。
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