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本产品是一种比较强烈的细胞组织裂解液。SDS裂解液裂解得到的蛋白样品可以用于常规的PAGE、Western、免疫沉淀(IP)、免疫共沉淀(co-IP)和ELISA等。

本产品可以用于动物、植物的细胞或组织样品，也可以用于真菌或细菌样品。用SDS裂解液裂解得到的蛋白样品，可以用百奥莱博的BCA蛋白浓度测定试剂盒(货号：YT036/YT037)测定蛋白浓度。由于含有较高浓度的去垢剂，不能用Bradford法测定由本裂解液裂解得到样品的蛋白浓度。

• 为取得最佳的使用效果，尽量避免过多的反复冻融。可以适当分装后使用。
  
• 需自备PMSF。PMSF(货号：YT615)可以向百奥莱博订购。也可以选购总体效果更佳的百奥莱博的通用型蛋白酶磷酸酶抑制剂混合物(货号：YTB4015)，或者根据具体用途选择通用型蛋白酶和磷酸酶抑制剂混合物(质谱兼容，货号：YTB4017)、蛋白酶和磷酸酶抑制剂混合物(哺乳动物样品专用，货号：YTB4018)、蛋白酶磷酸酶抑制剂混合物(植物样品抽提用，货号：YTB4016)、蛋白酶磷酸酶抑制剂混合物(真菌或酵母抽提用，货号：YTB4019)、蛋白酶磷酸酶抑制剂混合物(细菌抽提用，货号：YTB4020)。如果无需检测磷酸化蛋白，也可以选不含磷酸酶抑制剂的蛋白酶抑制剂化合物。
  
• 裂解样品的所有步骤都需在冰上或4℃进行。
  
• 关于裂解液的选择，一方面可以参考百奥莱博的相关网页：http://www.bjbalb.com/article.aspx?dd=64选择合适的裂解液；另一方面也需要通过一些预实验来摸索最佳的适合您实验条件的裂解液。
  
• 如果使用本SDS裂解液用于ChIP实验，在对超声后基因组DNA大小进行检测时，如果采用琼脂糖凝胶中添加NadRed、NadGreen、Redye或Gedye等安全染料或使用含该类安全染料的DNA上样缓冲液的方式，由于电泳时SDS会与此类染料结合形成异常条带，条带通常在600～1000bp左右，因此会对超声后基因组DNA大小的判断造成一定的影响。建议采用“电泳完毕后对琼脂糖凝胶染色”的方式进行条带大小的检测，使用该方法不会有异常条带出现，不影响对超声后基因组DNA大小的判断，而且条带大小更准确。

• 对于培养细胞样品：
  
  • 融解SDS裂解液，混匀。取适当量的裂解液，在使用前数分钟内加入PMSF，使PMSF的最终浓度为1mM，或者根据实验需要加入适当的上述蛋白酶磷酸酶抑制剂混合物。
    
  • 对于贴壁细胞：去除培养液，用PBS、生理盐水或无血清培养液洗一遍(如果血清中的蛋白没有干扰，可以不洗)。按照6孔板每孔加入150～250μL裂解液的比例加入裂解液。用枪吹打数下，使裂解液和细胞充分接触。通常裂解液接触动物细胞1～2秒后，细胞就会被裂解。植物细胞宜在冰上裂解2～10min。如果用于ChIP，初步裂解后需在冰浴上继续裂解10分钟。
    对于悬浮细胞：离心收集细胞，轻轻vortex或者弹击管底以把细胞尽量分散开。按照6孔板每孔细胞加入150～250μL裂解液的比例加入裂解液。再用手指轻弹以充分裂解细胞。如果细胞量较多，必需分装成50～100万细胞/管，然后再裂解。充分裂解后应没有明显的细胞沉淀。如果用于ChIP，初步裂解后需在冰浴上继续裂解10分钟。
    对于细菌或酵母：对于1mL菌液或酵母液，离心去上清，如果有必要可以使用PBS洗涤一次，充分去除液体后，轻轻vortex或者弹击管底以把细菌或酵母尽量弹散。加入100～200μL裂解液，轻轻vortex或者弹击管底以混匀，冰上裂解2～10min。如果希望获得更好的裂解效果，细菌和酵母可以分别使用溶菌酶和破壁酶(Lyticase)消化，然后再使用本裂解液进行裂解。
    裂解液用量说明：通常6孔板每孔细胞或者1mL的菌液或酵母液中的细菌和酵母量加入150μL裂解液已经足够，但如果细胞密度非常高可以适当加大裂解液的用量到200μL或250μL。每100万动物细胞用100μL本产品裂解后获得的上清，其蛋白浓度约为2～4mg/ml，不同细胞有所不同。
    
  • 充分裂解后，10000～14000g离心3～5分钟，取上清，即可进行后续的PAGE、Western和ChIP等操作。
• 对于组织样品：
  
  • 把组织剪切成细小的碎片。
    
  • 融解SDS裂解液，混匀。取适当量的裂解液，在使用前数分钟内加入PMSF，使PMSF的最终浓度为1mM，或者根据实验需要加入适当的上述蛋白酶磷酸酶抑制剂混合物。
    
  • 按照每20mg组织加入150～250μL裂解液的比例加入裂解液。(如果裂解不充分可以适当添加更多的裂解液，如果需要高浓度的蛋白样品，可以适当减少裂解液的用量。)
    
  • 用玻璃匀浆器匀浆，或使用手持式组织研磨仪研磨，直至充分裂解。也可以把组织样品冷冻后液氮研磨，研磨充分后加入裂解液进行裂解。如果用于ChIP，初步裂解后需在冰浴上继续裂解10分钟。
    
  • 充分裂解后，10000～14000g离心3～5分钟，取上清，即可进行后续的PAGE、Western和ChIP等操作。每20mg冻存的小鼠肝脏组织用200μL本裂解液裂解后获得的上清，其蛋白浓度约为15～25mg/ml，不同状态的不同组织有所不同。
    
  • 如果组织样品本身非常细小，可以适当剪切后直接加入裂解液裂解，通过强烈vortex使样品裂解充分。然后同样离心取上清，用于后续实验。直接裂解的优点是比较方便，不必使用匀浆器或研磨设备，缺点是不如匀浆或研磨那样裂解得比较充分。