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蛋白质条带的银染是基于蛋白质中各种基团（如巯基、羰基等）与银的结合，然后用还原剂如甲醛在碱性环境下使Ag+还原成银颗粒，可把蛋白电泳带染成黑褐色。它主要用于聚丙烯酰胺凝胶电泳染色。其灵敏度比考马斯亮蓝高，该产品整个过程操作简单，灵敏度高，能检测到10ng以下的蛋白条带。

• 银染主要出现在PAGE胶的表面，使用薄胶（0.5～0.75mm）可以提高灵敏度。
  
• 对于考马斯亮蓝染色的SDS-PAGE胶，可用甲醇将胶漂洗后，继续进行银染。考染过程中的乙酸会干扰银染，因此要确保将PAGE凝胶中残留的乙酸彻底洗净。
  
• 不同蛋白质对银染的反应是不一样的，尤其是碱性蛋白染色效果差。因此，不宜用银染测定不同蛋白的比例。
  
• 染色过程中，缓慢的振荡是必要的，一般选择40～60rpm。
  
• 凝胶表面的裂纹多是由于压力、手印及表面干燥所致，所以全程中都应带手套操作。
  
• PAGE凝胶背景呈均一的黑色多是水中的杂质引起的，所以溶液的配制应使用电导率小于1μS的去离子水。
  
• 如果染色后有呈灰尘或烟雾状灰色或棕色的沉淀出现在凝胶表面，可能是在几步漂洗过程中洗得不够彻底，或是染色过程时温度太低。
  
• 较深的银染背景多是丙烯酰胺中的杂质所致。
  
• PAGE胶中的甘油、尿素、甘氨酸、Triton X-100和两性电解质这些物质会干扰银染。
  
• 室温操作时，温度的波动往往会干扰银染的效果，恒温水浴可以解决这个问题。
  
• 凭借戊二醛预处理可以使各种蛋白质的染色提高40倍。
  
• 染色使用的玻璃器皿必须非常干净，用酸浸泡可以满足要求。
  
• 银染应尽快照相，随着时间延长，蛋白条带会变浅，而背景会加深。
  
• 银染容器最理想的是玻璃平皿，其次是搪瓷盘和密胺塑料盘等。
  
• 试剂如有沉淀析出，混匀溶解（可加热）后室温使用。

• 固定液：取40mL无水乙醇，10mL染色液A加去离子水至100mL，混匀。
  
• 敏化液：取30mL无水乙醇，10mL染色液C加去离子水至100mL，混匀。
  
• 银染液：称取0.12g试剂E，用50mL去离子水溶解，加入10μL染色液B混匀，加去离子水至100mL现用现配。
  
• 显色液：10mL显色液D和30μL染色液B加入去离子水至100mL，混匀，现用现配。
  
• 终止液：取5mL染色液A加去离子水稀释至100mL，现用现配。

• PAGE电泳结束后，将PAGE蛋白胶转移至玻璃平皿或搪瓷盘中，用固定液固定30min。
  
• 将PAGE胶转移至敏化液中，使染液没过PAGE胶，室温作用30min。可置于摇床上缓慢摇晃。
  
• 弃去敏化液，用去离子水漂洗三次，每次10min。
  
• 将PAGE胶转移至银染液中，使染液没过PAGE胶，室温摇晃40min。
  
• 将PAGE胶转移至显色液中，使显色液没过PAGE胶，室温摇晃，该显色一般在10min左右。
  
• 再选择合适的时间进行终止，弃去显色液，加入终止液即可。最后可进行信号收集保存。