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来自细胞或组织材料的核酸往往对蛋白研究产生干扰，稳定、高效地排除核酸对蛋白质及其下游分析的影响，是获得好的蛋白研究相关数据的诀窍之一。在细胞中，核酸和蛋白相对有各自分布的区域，而进行抽提时，细胞的天然结构被破坏，核酸与蛋白混合在一起，就会造成一些目标蛋白或多肽发生沉淀丢失，或者由于核酸和蛋白的结合造成电泳（特别是2D）中蛋白泳动表现改变和一些迁移假象、条纹等情况。很多操作者采用机械法，比如超声波处理等，或DNase及RNase消化来减少或消除核酸的影响，但是由于操作是非标准化操作，往往很难评估核酸清除步骤的有效性和数据稳定性。

核酸去除液是一种全能酶，可以降解所有形式的DNA和RNA(单链、双链、线形和环状)，而无蛋白水解活性。其在广泛的条件下都能保持很高的活性和特异性。核酸去除液能迅速水解核酸，从而成为降低粘度，节省时间，增加蛋白产量的理想工具。

• 每100μL蛋白裂解液中加入10μL核酸去除液，混匀。
  
• 于室温放置30分钟～1小时。
  
• 在4℃，14000rpm条件下离心15分钟。
  
• 将上清吸入另一预冷的干净离心管，即可得到除去核酸的蛋白样本。
  
• 将上述蛋白提取物定量后分装于-80℃冰箱保存备用或直接用于下游实验。
  
  • 建议用BCA法进行蛋白定量。
    
  • 蛋白样品-80℃存放一年没有问题。注意不要被蛋白酶水解掉，不要被细菌污染。