产品货号:
GS4368
中文名称:
Q Beadose HP琼脂糖
英文名称:
Q Beadose HP
产品规格:
25mL|100mL
发货周期:
1~3天
产品价格:
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Q/SP Beadose HP琼脂糖是强离子交换剂。它们基于刚性,高度交联的珠状琼脂糖,平均珠粒直径为34μm。
该产品保留了天然多糖化合物极好的亲水性及大网架结构,与生物活性大分子有很好的相容性,具有高离子交换容量,无非特异性吸附,高分辨率,快流速操作等特点。
广泛用于蛋白质、核酸、多肽及多糖等的生物大分子实验室规模制备和生物制药、生物工程的大工业化制备。
保存:2~8℃,不可冻存
离子交换树脂每次使用后可以用1M NaCl甚至更高离子强度溶液或高pH溶液清洗,然后用至少5倍柱体积的Buffer进行平衡至离子强度或pH值稳定。
表2.建议用于Q Beadose HP琼脂糖的缓冲液
表3.建议用于SP Beadose HP琼脂糖的缓冲液
相关搜索:Q Beadose HP琼脂糖,强离子交换剂,离子交换介质
该产品保留了天然多糖化合物极好的亲水性及大网架结构,与生物活性大分子有很好的相容性,具有高离子交换容量,无非特异性吸附,高分辨率,快流速操作等特点。
广泛用于蛋白质、核酸、多肽及多糖等的生物大分子实验室规模制备和生物制药、生物工程的大工业化制备。
树脂类型 | Q Beadose HP琼脂糖 | SP Beadose HP琼脂糖 |
产品编号 | GS4368 | GS4825 |
离子交换类型 | 强阴离子 | 强阳离子 |
电荷 | -N+(CH3)3 | SO3- |
总离子载量 | 0.14~0.20mmol Cl-/mL | 0.15~0.20mmol H+/mL |
结合能力 | 70mg BSA/mL树脂 | 55mg RNase/mL树脂 |
推荐使用流量 | 30~150cm/h | |
耐压 | 0.5 MPa(5 bar,70 psi) | |
平均粒径 | 34μm(25~48μm) | |
分子排阻范围 | IgG 4×106 | |
基质 | 6%高度交联的琼脂糖 | |
pH稳定性 | 1~14(短期),2~12(长期) | 3~14(短期),4~13(长期) |
化学稳定性 | 8M尿素,6M盐酸胍,70%乙醇,1M NaOH和1M乙酸 | |
保存缓冲液 | 20%乙醇(Q);0.2M乙酸钠、20%乙醇(SP) |
组分 | 25mL | 100mL |
Q Beadose HP琼脂糖 | 25mL | 100mL |
说明书 | 1份 | 1份 |
保存:2~8℃,不可冻存
- Buffer的准备:
所用水和Buffer在使用之前建议用0.22μm或0.45μm滤膜过滤。
原则上离子交换是低盐结合高盐洗脱,Binding Buffer根据您需要的结合pH条件选择在这个pH下最适的缓冲液,常规有磷酸盐,Tris,碳酸盐,醋酸盐等,推荐浓度10~100mM。
Wash Buffer与Elution Buffer在Binding Buffer的基础上补加氯化钠,可以设定不同氯化钠梯度进行洗杂洗脱,推荐的浓度是0.1M,0.3M,0.5M,1M。建议做样品小试,以确定最佳洗杂洗脱浓度。- 对于Q Beadose HP琼脂糖来说,Binding Buffer必须至少高于待结合分子的等电点(pI)一个pH单位。
- 对于SP Beadose HP琼脂糖来说,Binding Buffer必须至少低于待结合分子的等电点(pI)一个pH单位。不同pH值的缓冲液可以参考表2和表3。
- 对于Q Beadose HP琼脂糖来说,Binding Buffer必须至少高于待结合分子的等电点(pI)一个pH单位。
- 样品准备:样品在上样前建议离心或用0.22μm或0.45μm滤膜过滤,减少杂质,提高蛋白纯化效率和防止堵塞柱子。
- 样品纯化:
以Q Beadose HP为例- 将介质装入合适的层析柱,层析用5倍柱体积的Binding Buffer进行平衡,使填料处于与目的蛋白相同的缓冲体系下,起到保护蛋白的作用。
- 将样品加到平衡好的Q Beadose HP中(保证目的蛋白与Q Beadose HP充分接触,提高目的蛋白的回收率),收集流出液。
- 使用10~15倍柱体积的Wash Buffer进行清洗,去除非特异性吸附的杂蛋白,收集洗杂液。
- 使用5~10倍柱体积的Elution Buffer,收集洗脱液,即目的蛋白组分。
- 依次使用3倍柱体积的Binding Buffer和5倍柱体积的去离子水平衡填料,最后再用5倍柱体积的20%的乙醇平衡,然后保存在等体积的20%的乙醇中,置于4℃保存,防止填料被细菌污染。
- 将介质装入合适的层析柱,层析用5倍柱体积的Binding Buffer进行平衡,使填料处于与目的蛋白相同的缓冲体系下,起到保护蛋白的作用。
- SDS-PAGE检测:
将使用纯化产品得到的样品(包括流出组分、洗杂组分和洗脱组分)以及原始样品用SDS-PAGE检测纯化效果。
离子交换树脂每次使用后可以用1M NaCl甚至更高离子强度溶液或高pH溶液清洗,然后用至少5倍柱体积的Buffer进行平衡至离子强度或pH值稳定。
- 在位清洗(CIP):
离子交换树脂可以重复使用而无需再生,但随着非特异性结合的蛋白的增多和蛋白的聚集,往往造成流速和结合载量都下降,这时可按照下面方法对树脂进行清洗。 - 去除一些沉淀或变性物质,建议使用下面的方法:
用2倍柱体积的1M NaOH溶液进行清洗,然后立即用5倍柱体积的1×PBS,pH7.4清洗。 - 去除一些疏水性吸附造成的非特异性吸附物质:
用3~4倍柱体积的70%乙醇或3~4倍柱体积的1% Triton X-100清洗,然后立即用5倍柱体积的1×PBS,pH7.4清洗。 - 去除一些离子键结合物质:
用3~4倍柱体积的2M NaCl清洗,然后立即用5倍柱体积的1×PBS,pH7.4清洗。
问题 | 原因分析 | 推荐解决方案 |
柱子反压过高 | 填料被堵塞 | 按照上述方案进行树脂清洗。 |
裂解液中含有微小的固体颗粒,建议上柱前用0.22μm或0.45μm滤膜过滤 | ||
洗脱样品较杂 | 树脂重复多次使用 | 按照上述方案进行树脂清洗或更换新的填料 |
平衡不充分 | 增加平衡液体积,确保树脂充分平衡/洗杂 |
表2.建议用于Q Beadose HP琼脂糖的缓冲液
缓冲液 | 反离子 | 浓度(mM) | pKa(25℃) |
N-甲基哌嗪 | Cl- | 20 | 4.8 |
哌嗪 | Cl-,HCOO- | 20 | 5.7 |
L-组氨酸 | Cl- | 20 | 6.0 |
Bis-Tris | Cl- | 20 | 6.5 |
1,3-二[三(羟甲基)甲氨基]丙烷 | Cl- | 20 | 6.8 |
三羟乙基胺 | Cl-,CH3COO- | 20 | 7.8 |
Tris | Cl- | 20 | 8.1 |
N-甲基二乙醇胺 | Cl-,CH3COO-,SO42- | 50 | 8.5 |
二乙醇胺 | Cl- | 20(pH8.4) 50(pH8.8) | 8.9 |
1,3-丙二胺 | Cl- | 20 | 8.6 |
乙醇胺 | Cl- | 20 | 9.5 |
哌嗪 | Cl- | 20 | 9.7 |
1,3-丙二胺 | Cl- | 20 | 10.5 |
表3.建议用于SP Beadose HP琼脂糖的缓冲液
缓冲液 | 反离子 | 浓度(mM) | pKa(25℃) |
柠檬酸盐 | Na+,Li+ | 20 | 3.1 |
乙酸盐 | Na+,Li+ | 50 | 4.8 |
丙二酸盐 | Na+,Li+ | 50 | 5.7 |
磷酸盐 | Na+ | 50 | 7.2 |
N,N-双(2-羟乙基)甘氨酸 | Na+ | 50 | 8.4 |
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