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SDS-PAGE不仅可用于检测蛋白质的相对分子质量，同时也是分离纯化蛋白质的重要工具之一，随着蛋白质技术的微量化，有必要从凝胶中回收蛋白质以用于制备抗体、免疫印迹、氨基酸组分分析或末端序列测定等，本制品就是专门为此用途开发的微量蛋白胶回收法，本制品适用于从考染(GS1479/GS1549)，铜染(GS1532)或锌染(GS1534)中回收蛋白质，回收效率在50～80%，能够使用20次。

• 操作简单，无需复杂而昂贵的仪器(如电洗脱仪)；
  
• 适用于变性胶(SDS-PAGE)和非变性胶(Native-PAGE)；
  
• 回收率一般在50～80%之间(跟蛋白质大小，洗脱时间相关)；
  
• 跟后续的实验兼容，包括1D、2D电泳、质谱检测(需要去盐)等。

• 收到后将所有试剂置于2～8℃保存，溶液B易挥发同时避免火源，溶液A在低温下容易形成沉淀，请在使用前30℃加热溶解，如按要求保存可存储两年。
  
• 在保证完全切取到目的蛋白质后，尽量去除多余的胶片。
  
• 如果蛋白质的分子量较大，所加样的量较多，胶浓度比较大，可以适当延长温育时间。
  
• 为了有比较好的回收效果，在进行胶中蛋白质回收时，每个点样孔中所加的蛋白质量最好控制在2μg～40μg之间。
  
• 采用含有Urea、Thiourea、SB3-10等强溶解能力试剂的溶解液有助于沉淀蛋白的完全溶解。
  
• 研磨杆研磨碎片时，越充分越好，这样有利于蛋白质扩散到溶液A中。
  
• 采用此试剂盒进行胶回收时，一般不建议采用银染，因为此时回收效率较低。
  
• 目的蛋白回收效率与蛋白的分子量大小有一定的关系，在10 KD以下的多肽回收效率明显降低，如果大于120 KD，则需要增加步骤2中的振荡过夜时间。
  
• 如果在制浓缩胶时不加梳子，将蛋白溶液均匀的铺在浓缩胶面上进行电泳，之后将整个胶块从左到右的一条完整的目的蛋白条带切下回收，则需要按照常规梳子上所带点样孔的数量，将所用试剂按照倍数增加。
  
• 所加溶液A和溶液B的体积需要保持一定的比例关系，溶液B的体积必须是溶液A体积5倍或5倍以上，以避免在步骤3的过程中产生不必要的杂质沉淀。
  
• 过程中所加试剂量是针对80×60×1mm凝胶而定，若体积较大，可适当增加各溶液的体积。
  
• 溶液B请在通风橱使用，使用时戴口罩，护目镜及手套。
  
• 产品中的保存条件及有效期均以未开封情况下计算，为了防止产品与空气接触发生化学反应影响产品性能，将未使用完毕的组分按存储要求保存同时建议开封后的组分尽快使用完毕。
  
• 使用后请旋紧瓶盖，防止溶液挥发和与空气中的物质发生化学反应。
  
• 本试剂盒只能够用于体外实验，不能够用于临床、治疗和动物体内实验等，由此产生的后果概不承担责任。

• 用手术刀片将铜染(GS1532)或锌染(GS1534)的胶块中含有目的条带的部分胶切下，放入1.5mL的离心管中，用相应的消除液将胶中蛋白质条带脱色到胶体接近无色，室温12000rpm(12830g)，离心5min，尽量去除上清，保留胶体。
  
  • 对于考染(GS1479/GS1549)或其他考染方法，直接将不需要脱色液脱色的或经过脱色液脱色的胶块中含有目的条带部分切下，放入1.5mL的离心管中，用双蒸水洗两次，每次5min，再进行步骤2。
• 用研磨杆将离心管中的胶体研磨成细小的碎片，加入400μL的溶液A，在室温条件下，脱色摇床上振荡过夜(16~18h)，期间可取出涡旋振荡几次。
  
• 再转置离心机中，室温12000rpm，离心15min，转移上清到一支新的5mL离心管中，加入2mL的预冷的溶液B，混匀，4℃环境下静置30min。
  
• 再转置离心机中，室温12000rpm，离心15min，去除上清，再将离心管放置在通风厨中，待残留的液体挥发干净。
  
  • 也可以再次加入0.5mL的溶液B，振荡洗涤沉淀，4℃放置15min，再重复步骤4一到两次，这样得到的蛋白质更纯净。
• 选用最适的缓冲液溶解沉淀的蛋白质，以方便进行后续的电泳和质谱测序等实验。
  
  • 最适的缓冲液需要结合后续实验自主选择相应的蛋白质溶解液。