产品货号：
KM0130
中文名称：
TRITC标记鬼笔环肽(贮存液)
英文名称：
TRITC-Phalloidin
产品规格：
300T
发货周期：
1～3天
产品价格：
询价
本制品为TRITC荧光标记的鬼笔环肽（TRITC-Phalloidin），以溶于甲醇的20μM储存液形式提供，具体的工作浓度请参考文献或自身实验体系来调整，常用浓度范围80-200nM。按照100nM的工作浓度来算，可进行300次细胞染色。
鬼笔环肽（Phalloidin）最初是从毒蘑菇鬼笔鹅膏（Amanita phalloides）中分离到的一种七肽毒素，以极高的亲和力和特异性结合肌动蛋白丝F-actin（聚合形式的肌动蛋白），不会结合单体肌动蛋白（G-actin）。不像肌动蛋白抗体，同时识别单体和聚合形式的肌动蛋白。鬼笔环肽对大小纤维的亲和力相近，在许多不同的动植物物种的肌肉和非肌肉细胞中，基本都按照一个肌动蛋白亚基与一个鬼笔环肽分子的化学计量比结合。不像肌动蛋白抗体，对不同物种或来源的肌动蛋白亲和力会发生明显变化。鬼笔环肽的非特异性结合几乎可忽略，染色和未染色区域的差异极其明显。鬼笔环肽使得肌动蛋白聚合/解离的临界浓度降至1μg/ml，可用作一种聚合增强剂。另外，产生的复合物高度稳定（解离常数约3×10–8M），能够抑制细胞松弛素、碘化钾和温度上升引起的去聚合和去组装活性。
鬼笔环肽及其衍生物在纳摩尔浓度即可对F-actin染色，且水溶性良好，是非常实用和方便的探针，对组织切片、细胞培养物或无细胞体系内的F-actin进行定性和定量研究。另外，鬼笔环肽及其衍生物很小，直径约12–15 ?，分子量<2000 Da，经标记后的F-actin仍维持许多标记前的功能。比如，标记的甘油抽提肌纤维仍能收缩；标记的肌动蛋白丝仍能在固相肌球蛋白基质中移动。
产品应用：
1．对固定的组织切片和组织细胞培养物进行肌动蛋白丝（F-actin）的荧光染色；
2．体外制备稳定的荧光肌动蛋白丝（F-actin）。
保存：-20℃避光保存，1年有效。
注意事项：
1．本品具有一定的毒性，LD50=2mg/kg，操作时请注意防护。
2．本品（Cat#KM0130）以溶于甲醇的储存液（20μM）形式提供，300T包装，适合用量少的研究者；另提供冻干粉形式（Cat#KM0129），1mg包装，相对更经济，适合用量多的研究者；
3．为了您的安全和健康，请穿实验服并戴一次性手套操作。
操作流程（免疫荧光染色）：
有几种方法都能用来染色组织细胞培养物内的肌动蛋白丝（F-actin）染色，其中，固定步骤在获得可信且具代表性的细胞F-actin分布情况中至关重要。固定步骤基于实验自身需求来选择。多聚甲醛或戊二醛都能得到优秀的F-actin染色和良好的板状伪足维持保存。
一、实验材料准备
1.1 TRITC Phalloidin（Cat# KM0130）
1.2 1×PBS Buffer（pH 7.4）,for Cell Culture（Cat#SH30256.01）
1.3固定液（溶于PBS的4%多聚甲醛，pH 7.0）（Cat# KM0181）
1.4破膜液（溶于PBS的0.5%Triton X-100）
1.5抗荧光淬灭剂（Cat# KM0182或Cat# KM0183）
1.6即用型DAPI染色液（Cat# KM0160）
1.8（可选）BSA,Standard Grade（Cat# KM0184）
1.9盖玻片密封液（透明指甲油）
二、染色工作液准备
2.1刚收到或第一次使用时，将充分融化的本品（20μM储存液）根据单次使用量进行分装，置于-20℃避光保存，一年稳定。
注：TRITC- Phalloidin的分子量（Mw）以标签为准。
2.2正式实验前，使用1×PBS Buffer（pH 7.4）稀释储存液到需要的工作浓度，常用的工作浓度范围为80-200nM。可以100nM为起始工作浓度，最佳的工作浓度请参考文献或根据实验室现有体系来摸索。
注①：可使用含1%BSA的PBS Buffer稀释储存液，能够降低非特异背景染色，也能最小化鬼笔环肽粘附到管壁的可能性。
注②：染色工作液现配现用，室温避光保存。
三、染色流程
3.1细胞爬片培养，使其密度至少达半汇合。
3.2吸掉培养液，用37℃预热的1×PBS Buffer（pH 7.4）清洗细胞2次。
3.3用溶于PBS的4%多聚甲醛固定细胞，室温固定10min。
注意：固定过程中甲醇能破坏肌动蛋白，因此，固定液中最好避免接触任何甲醇。最好的固定液是无甲醇的甲醛。
3.4用1×PBS Buffer清洗细胞2-3次，室温下30s/次。
3.5用破膜缓冲液透化细胞，室温处理5min。
3.6用1×PBS Buffer清洗细胞2-3次，室温下30s/次。
3.7取200μl现配的TRITC-Phallodin染色工作液，完全覆盖盖玻片上的细胞，室温避光孵育30min。
注意：通常情况4℃-37℃都适合用于染色。为了避免工作液的挥发，孵育过程将盖玻片置于一密封的容器内。
3.8用1×PBS Buffer清洗细胞2-3次，室温下30s/次。
3.9取200μl DAPI溶液（100nM）或商业化的即用型DAPI染色液对细胞核复染，室温约30s。
3.10用1×PBS Buffer清洗细胞1-2次，室温下30s/次。
3.11将盖玻片倒置在滴有一滴抗荧光淬灭剂（如Fluoromount-GTM，Cat# KM0182）的载玻片上。用纸巾轻轻吸掉多余淬灭剂，然后用透明指甲油密封盖玻片四周。将此法处理玻片置于4℃避光存放至少6个月仍能维持F-actin染色。
可选：完成步骤3.8后，直接将盖玻片倒置在含DAPI的抗荧光淬灭剂（如DAPI Fluoromount-GTM，Cat# KM0183）的载玻片上。然后吸掉多余淬灭剂并用指甲油密封盖玻片四周。
3.12荧光显微镜下观察染色结果，选择TRITC激发/发射滤片（Ex/Em=546/575nm）和DAPI激发/发射滤片（Ex/Em=364/454nm）。
相关搜索：TRITC标记鬼笔环肽(贮存液)，TRITC-Phalloidin
鬼笔环肽（Phalloidin）最初是从毒蘑菇鬼笔鹅膏（Amanita phalloides）中分离到的一种七肽毒素，以极高的亲和力和特异性结合肌动蛋白丝F-actin（聚合形式的肌动蛋白），不会结合单体肌动蛋白（G-actin）。不像肌动蛋白抗体，同时识别单体和聚合形式的肌动蛋白。鬼笔环肽对大小纤维的亲和力相近，在许多不同的动植物物种的肌肉和非肌肉细胞中，基本都按照一个肌动蛋白亚基与一个鬼笔环肽分子的化学计量比结合。不像肌动蛋白抗体，对不同物种或来源的肌动蛋白亲和力会发生明显变化。鬼笔环肽的非特异性结合几乎可忽略，染色和未染色区域的差异极其明显。鬼笔环肽使得肌动蛋白聚合/解离的临界浓度降至1μg/ml，可用作一种聚合增强剂。另外，产生的复合物高度稳定（解离常数约3×10–8M），能够抑制细胞松弛素、碘化钾和温度上升引起的去聚合和去组装活性。
鬼笔环肽及其衍生物在纳摩尔浓度即可对F-actin染色，且水溶性良好，是非常实用和方便的探针，对组织切片、细胞培养物或无细胞体系内的F-actin进行定性和定量研究。另外，鬼笔环肽及其衍生物很小，直径约12–15 ?，分子量<2000 Da，经标记后的F-actin仍维持许多标记前的功能。比如，标记的甘油抽提肌纤维仍能收缩；标记的肌动蛋白丝仍能在固相肌球蛋白基质中移动。
产品应用：
1．对固定的组织切片和组织细胞培养物进行肌动蛋白丝（F-actin）的荧光染色；
2．体外制备稳定的荧光肌动蛋白丝（F-actin）。
保存：-20℃避光保存，1年有效。
注意事项：
1．本品具有一定的毒性，LD50=2mg/kg，操作时请注意防护。
2．本品（Cat#KM0130）以溶于甲醇的储存液（20μM）形式提供，300T包装，适合用量少的研究者；另提供冻干粉形式（Cat#KM0129），1mg包装，相对更经济，适合用量多的研究者；
3．为了您的安全和健康，请穿实验服并戴一次性手套操作。
操作流程（免疫荧光染色）：
有几种方法都能用来染色组织细胞培养物内的肌动蛋白丝（F-actin）染色，其中，固定步骤在获得可信且具代表性的细胞F-actin分布情况中至关重要。固定步骤基于实验自身需求来选择。多聚甲醛或戊二醛都能得到优秀的F-actin染色和良好的板状伪足维持保存。
一、实验材料准备
1.1 TRITC Phalloidin（Cat# KM0130）
1.2 1×PBS Buffer（pH 7.4）,for Cell Culture（Cat#SH30256.01）
1.3固定液（溶于PBS的4%多聚甲醛，pH 7.0）（Cat# KM0181）
1.4破膜液（溶于PBS的0.5%Triton X-100）
1.5抗荧光淬灭剂（Cat# KM0182或Cat# KM0183）
1.6即用型DAPI染色液（Cat# KM0160）
1.8（可选）BSA,Standard Grade（Cat# KM0184）
1.9盖玻片密封液（透明指甲油）
二、染色工作液准备
2.1刚收到或第一次使用时，将充分融化的本品（20μM储存液）根据单次使用量进行分装，置于-20℃避光保存，一年稳定。
注：TRITC- Phalloidin的分子量（Mw）以标签为准。
2.2正式实验前，使用1×PBS Buffer（pH 7.4）稀释储存液到需要的工作浓度，常用的工作浓度范围为80-200nM。可以100nM为起始工作浓度，最佳的工作浓度请参考文献或根据实验室现有体系来摸索。
注①：可使用含1%BSA的PBS Buffer稀释储存液，能够降低非特异背景染色，也能最小化鬼笔环肽粘附到管壁的可能性。
注②：染色工作液现配现用，室温避光保存。
三、染色流程
3.1细胞爬片培养，使其密度至少达半汇合。
3.2吸掉培养液，用37℃预热的1×PBS Buffer（pH 7.4）清洗细胞2次。
3.3用溶于PBS的4%多聚甲醛固定细胞，室温固定10min。
注意：固定过程中甲醇能破坏肌动蛋白，因此，固定液中最好避免接触任何甲醇。最好的固定液是无甲醇的甲醛。
3.4用1×PBS Buffer清洗细胞2-3次，室温下30s/次。
3.5用破膜缓冲液透化细胞，室温处理5min。
3.6用1×PBS Buffer清洗细胞2-3次，室温下30s/次。
3.7取200μl现配的TRITC-Phallodin染色工作液，完全覆盖盖玻片上的细胞，室温避光孵育30min。
注意：通常情况4℃-37℃都适合用于染色。为了避免工作液的挥发，孵育过程将盖玻片置于一密封的容器内。
3.8用1×PBS Buffer清洗细胞2-3次，室温下30s/次。
3.9取200μl DAPI溶液（100nM）或商业化的即用型DAPI染色液对细胞核复染，室温约30s。
3.10用1×PBS Buffer清洗细胞1-2次，室温下30s/次。
3.11将盖玻片倒置在滴有一滴抗荧光淬灭剂（如Fluoromount-GTM，Cat# KM0182）的载玻片上。用纸巾轻轻吸掉多余淬灭剂，然后用透明指甲油密封盖玻片四周。将此法处理玻片置于4℃避光存放至少6个月仍能维持F-actin染色。
可选：完成步骤3.8后，直接将盖玻片倒置在含DAPI的抗荧光淬灭剂（如DAPI Fluoromount-GTM，Cat# KM0183）的载玻片上。然后吸掉多余淬灭剂并用指甲油密封盖玻片四周。
3.12荧光显微镜下观察染色结果，选择TRITC激发/发射滤片（Ex/Em=546/575nm）和DAPI激发/发射滤片（Ex/Em=364/454nm）。
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