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本糖原PAS染色液专门用于培养细胞的染色，采用独特配方技术，大大增强了染色效果；性能稳定，特异性强；操作简捷，仅需1h；过碘酸、苏木素浓度更低，更适用于细胞、超薄组织切片染色；无盐酸乙醇分化步骤。

糖原染色是病理学中常规的染色方法之一，McManus在1946年最先使用高碘酸-雪夫技术显示黏蛋白，该法常用来显示糖原和其他多糖，该技术不仅能显示糖原，还能显示中性黏液性物质和某些酸性物质以及软骨、垂体、霉菌、真菌、色素、淀粉样物质、基底膜等。过碘酸(又称高碘酸)是一种强氧化剂，它能氧化糖类及有关物质中的1，2-乙二醇基，使之变为二醛，醛与Schiff试剂能结合成一种品红化合物，产生紫红色；由于高碘酸还可氧化细胞内其他物质，使用时应注意选择好高碘酸浓度和氧化时间，使氧化控制在既能把乙二醇基氧化成醛基又不至于过氧化，这是很关键的步骤。

• 过碘酸氧化时间不宜过久，氧化时的温度以18～22℃最佳。
  
• 过碘酸溶液、Schiff Reagent、苏木素染色液应置于4℃密闭保存，使用时避免接触过多的阳光和空气，使用前最好提前30min取出恢复至室温，避光暗处使用。
  
• 过碘酸和Schiff中作用时间非常重要，该依据切片厚薄、细胞或组织的类别等决定。
  
• 该试剂常用于细胞、极其薄的切片，如果常规切片建议采购糖原PAS染色液。
  
• 为了您的安全和健康，请穿实验服并戴一次性手套操作。
  
• 试剂开封后请尽快使用，以防影响后续实验效果。

• 培养细胞用PAS固定液固定10～20min，水洗、晾干。
  
• 入过碘酸溶液室温氧化15～20min。
  
• 自来水冲洗2次，蒸馏水浸洗2次。
  
• 入Schiff Reagent并加盖，置于室温阴暗处浸染20～30min。
  
• 亚硫酸钠溶液滴洗2次，每次2min，该步骤亦可省略。
  
• 流水冲洗2min。
  
• 入Mayer苏木素染色液复染3～5min。
  
• 水洗、晾干、镜检。

• 颜色深浅很大程度上取决于样品在过碘酸溶液和Schiff Reagent中作用时间的长短。

• 取淀粉酶1g溶解于PBS(pH5.3) 100mL，处理30～60min，与其他样本共同入过碘酸溶液，结果应为阴性。
  
• 备选方案：取唾液片(过滤后用)处理30～60min，与其他样本共同入过碘酸溶液。结果应为阴性。
  
• 备选方案：如果对照片采用其自身样本，对照片不经过碘酸溶液这一步，直接入Schiff Reagent，结果应为阴性。