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糖原PAS快速染色液采用特别的配方技术，大大增强了染色效果；性能稳定，特异性强；操作简捷，仅需40min左右，与常规糖原PAS染色液相比，少了苏木素染细胞核的步骤，大大提高了工作效率，适用于石蜡切片和冰冻切片。

糖原染色是病理学中常规的染色方法之一，McManus在1946年最先使用高碘酸-雪夫技术显示黏蛋白，该法常用来显示糖原和其他多糖，该染色液不仅能够显示糖原，还能显示中性黏液性物质和某些酸性物质以及软骨、垂体、霉菌、真菌、色素、淀粉样物质、基底膜等。过碘酸(又称高碘酸)是一种强氧化剂，它能氧化糖类及有关物质中的1，2-乙二醇基，使之变为二醛，醛与Schiff试剂能结合成一种品红化合物，产生紫红色；由于高碘酸还可氧化细胞内其他物质，使用时应注意选择好高碘酸浓度和氧化时间，使氧化控制在既能把乙二醇基氧化成醛基又不至于过氧化，这是很关键的步骤。

• 切片脱蜡应尽量干净，否则影响染色效果。
  
• 过碘酸氧化时间不宜过久，氧化时的温度以18～22℃最佳。
  
• 过碘酸溶液和Schiff Reagent应置于4℃密闭保存，提前恢复到室温，避光暗处使用。
  
• 在过碘酸溶液和Schiff Reagent中的作用时间非常重要，应该依据切片厚薄、组织的类别等决定，冷冻切片染色时间尽量要短。
  
• 为了您的安全和健康，请穿实验服并戴一次性手套操作。
  
• 试剂开封后请尽快使用，以防影响后续实验效果。

• 组织固定:石蜡切片固定于Carnoy固定液较好，可在4℃下固定以为避免极化；小块组织2~3h，大块组织可以适当延长时间，但不宜超过18h；固定后的组织可直接用95%乙醇浸洗几次，然后入无水酒精脱水，再透明包埋。
  
• 石蜡切片二甲苯或脱蜡透明液脱蜡入蒸馏水；冰冻切片直接入蒸馏水。
  
• 自来水冲洗2～3min，蒸馏水浸洗2次。
  
• 入过碘酸溶液，室温氧化2～5min，一般不宜超过8min。
  
• 自来水冲洗1次，蒸馏水浸洗2次。
  
• 入Schiff Reagent，置于室温阴暗处浸染10～20min(冰冻切片10～15min，石蜡切片可适当延长时间)。
  
• 在上述操作过程中按亚硫酸溶液∶蒸馏水=1∶2的比例配制亚硫酸工作液；入亚硫酸工作液洗3次，每次2min。
  
• 自来水冲洗5～10min，更换蒸馏水冲洗。
  
• 逐级常规乙醇脱水，二甲苯或脱蜡透明液透明，中性树胶封固。

• 颜色深浅很大程度上取决于样品在过碘酸溶液和Schiff Reagent中作用时间的长短。

• 取淀粉酶1g溶解于PBS(pH5.3) 100mL，处理30～60min，与其他切片共同入过碘酸溶液。结果应为阴性。
  
• (备选方案)取唾液片(过滤后用)处理30～60min，与其他切片共同入过碘酸溶液。结果应为阴性。
  
• (备选方案)如果对照片采用其自身样本，对照片不经过碘酸溶液这一步，直接入Schiff Reagent。结果应为阴性。