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糖原PAS染色液图片
产品货号:
GL0612
中文名称:
糖原PAS染色液
英文名称:
产品规格:
4×50mL|4×100mL|4×500mL
发货周期:
1~3天
产品价格:
询价

糖原PAS染色液特点是采用独特配方技术,大大增强了染色效果;性能稳定,特异性强;操作简捷,仅需1h左右。




糖原染色是病理学中常规的染色方法之一,McManus在1946年最先使用高碘酸-雪夫技术显示黏蛋白,该法常用来显示糖原和其他多糖,该染色不仅能够显示糖原,还能显示中性黏液性物质和某些酸性物质以及软骨、垂体、霉菌、真菌、色素、淀粉样物质、基底膜等;过碘酸(又称高碘酸)是一种强氧化剂,它能氧化糖类及有关物质中的1,2-乙二醇基,使之变为二醛,醛与Schiff试剂能结合成一种品红化合物,产生紫红色,由于高碘酸还可氧化细胞内其他物质,使用时应注意选择好高碘酸浓度和氧化时间,使氧化控制在既能把乙二醇基氧化成醛基又不至于过氧化,这是很关键的步骤。




组分4×50mL4×100mL4×500mL保存
过碘酸溶液50mL100mL500mL4℃,避光
Schiff Reagent50mL100mL500mL
苏木素染色液50mL100mL500mL RT
酸性乙醇分化液50mL100mL500mL

保存:2~8℃,避光,有效期1年。


  • 10%福尔马林固定液
  • 蒸馏水、系列乙醇、二甲苯或环保脱蜡透明液、中性树胶



  • 切片脱蜡应尽量干净,否则影响染色效果。
  • 过碘酸氧化时间不宜过久,氧化时的温度以18~22℃最佳。
  • 过碘酸溶液和Schiff Reagent应置于4℃密闭保存,使用时避免接触过多阳光和空气,使用前,最好提前30min取出恢复到在室温,避光暗处使用。
  • 酸性乙醇分化液应经常更换新液,其分化时间应该依据切片厚薄、组织的类别和分化液的新旧而定,另外分化后自来水冲洗时间应该足够。
  • 在过碘酸溶液和Schiff Reagent中作用时间非常重要,该依据切片厚薄、组织的类别等决定。
  • 该染色液常用于常规组织切片染色,对于真菌、细胞、极其薄的切片,建议选购糖原PAS染色液(细胞专用)糖原PAS染色液(真菌专用),因为其过碘酸溶液和苏木素溶液浓度更低,不宜过染。
  • 冷冻切片染色时间尽量要短。
  • 试剂开封后请尽快使用,以防影响后续实验效果。



  • 常规固定,常采用10%福尔马林固定液,常规脱水包埋。
  • 石蜡切片二甲苯或脱蜡透明液脱蜡入蒸馏水;冰冻切片直接入蒸馏水。
  • 自来水冲洗2~3min,再用蒸馏水浸洗2次。
  • 入过碘酸溶液室温放置5~8min,一般不宜超过10min。
  • 自来水冲洗1次,再用蒸馏水浸洗2次。
  • 入Schiff Reagent置于室温阴暗处浸染10~20min,自来水冲洗10min。
  • 入苏木素染色液,染细胞核1~2min,酸性乙醇分化液分化2~5s。
  • 自来水冲洗10~15min,更换蒸馏水清洗,使其返蓝。
  • 逐级常规乙醇脱水,二甲苯或脱蜡透明液透明,中性树胶封固。



PAS反应阳性物质(糖原或多糖)红色或紫红色
细胞核蓝色
细胞质深浅不一的红色
  • 颜色深浅很大程度上取决于样品在过碘酸溶液和Schiff Reagent中作用时间的长短。



  • 取淀粉酶1g溶解于PBS(pH5.3) 100mL,处理30~60min,与其他切片共同入过碘酸溶液。结果应为阴性。
  • 备选方案:取唾液片(过滤后用)处理30~60min,与其他切片共同入过碘酸溶液。结果应为阴性。
  • 备选方案:如果对照片采用其自身样本,对照片不经过碘酸溶液这一步,直接入Schiff Reagent,结果应为阴性。

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