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本制品是基因组DNA专用的DNA洗脱液，可用于去除污染物，回收高质量的基因组DNA。

• 去污染效果好。为基因组DNA分子提供长期稳定储存的环境。
  
• 可用于过柱法DNA的洗脱或DNA溶解。
  
• 扩容性好，可小规模操作，也可以大规模操作。
  
• 处理后的样品原液或稍微稀释后即可用于PCR。

• 根据使用材料的不同进行下列操作：
  
  • 对贴壁细胞：吸尽培养液，在每10平方厘米细胞中加入0.8mL预热的动物DNA纯化溶液A，用枪充分吹打以确保细胞全部裂解，然后把裂解液转移到1.5mL塑料离心管中。
    
  • 对悬浮细胞：离心收集细胞，吸尽液体，在每1～5×10⁶悬浮细胞中加入0.8mL预热的动物DNA纯化溶液A，用枪充分吹打以确保细胞全部裂解。然后把裂解液转移到1.5mL塑料离心管中。如果是fibroblasts或carcinoma细胞，0.8mL动物DNA纯化溶液A的细胞使用量不要超过1×10⁶个细胞。
    
  • 对新鲜或冷冻的组织：先将剪切成小块的新鲜组织或冷冻保存的组织放入10mL或15mL塑料离心管中，每50～100mg组织加0.8mL预热的动物DNA纯化溶液A，用剪切式匀浆器匀浆30秒左右，然后把裂解液转移到1.5mL塑料离心管中。对肝、脾、胰、肾等细胞分裂十分旺盛的组织（细胞中含大量正在复制的DNA），建议组织的使用量不要超过50mg。
    
  • 对非冻型DNA保存液保存的组织：先用纸吸去保存液后再剪切成小块，其余操作同新鲜或冷冻组织的处理。
• 加入0.4mL预热的动物DNA纯化溶液B到裂解液中。由于动物DNA纯化溶液B十分粘稠，可将1mL枪头剪掉一截再用，也可以用称量方法加0.4g。加入动物DNA纯化溶液B后需要颠倒数次充分混匀。
  
• 65℃水浴5～10分钟。如果室温放置，DNA产量将降低10～20%。
  
• 加入0.2mL自备氯仿，振荡器上充分振荡混均30秒，此时溶液将呈乳白色。一定要确保离心管底的液体被震荡起来。
  
• 12000～15000×g室温离心2分钟。上清透明，中间层为白膜（蛋白层）。
  
• 小心将上清液平均转移到两个新的离心管中，避免触及中间的白膜。
  
• 每个管中加入1.5倍体积的动物DNA纯化溶液C，充分颠倒混匀。
  
• 分两次上柱（即先转移一半的混合液到离心吸附柱中，室温放置2分钟，12000～15000×g室温离心半分钟，弃穿透液，然后再将剩下的混合液到离心吸附柱中，室温放置2分钟，12000～15000×g室温离心半分钟，弃穿透液）。
  
• 加0.7mL通用洗柱液到离心吸附柱中，12000～15000×g室温离心半分钟，弃穿透液。
  
• 加0.3mL通用洗柱液到离心吸附柱中，12000～15000×g室温离心半分钟，弃穿透液。
  
• 12000～15000×g室温再离心半分钟。此步十分重要，否则残留的通用洗柱液会污染DNA。
  
• 室温放置半分钟使残留乙醇挥发。
  
• 将离心吸附柱转移到一新的1.5mL塑料离心管中，加入50～100μL DNA洗脱液（基因组DNA专用），室温放置离心吸附柱1～2分钟。
  
• 12000～15000×g室温离心半分钟，离心管中溶液即为DNA样品，可以立即使用或存放于冰箱待用。