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小鼠组织直扩试剂盒图片
产品货号:
SY1303
中文名称:
小鼠组织直扩试剂盒
英文名称:
Mouse Tissue Direct PCR Kit
产品规格:
20T|50T|200T|500T
发货周期:
1~3天
产品价格:
询价

本试剂盒可直接快速地对小鼠组织(如鼠尾、鼠耳、鼠趾等)样本进行PCR扩增,具有极强的样本兼容性。本试剂盒配备了强力的裂解缓冲液,可以快速裂解样品,释放基因组DNA。裂解产物可以直接加入到PCR反应体系中,无需精提纯化,操作方便。此外,本试剂盒对样品投入量要求低,2~5mm2鼠耳或肝脏、1~5mm鼠尾、1~2个脚趾均可进行实验。


本试剂盒提供的2×Hiper Tissue Direct PCR Mix为2倍浓度的热启动PCR反应液,包含了用于PCR扩增除模板和引物外的所有组分,大大简化操作过程,降低污染几率。本试剂盒可用于转基因鉴定、小鼠基因分型等。




组分20T50T200T500T
Lysis solution5mL12mL4×12mL10×12mL
Proteinase K (20mg/mL)250μL625μL2×1.25mL5×1.25mL
2×Hiper Tissue Direct PCR Mix500μL1.25mL5×1mL10×1.25mL

保存:-20℃,避光,有效期1年。


  • Lysis solution为裂解液,请戴手套操作,置于2~8℃保存,有效期1年。若长时间多次使用,请分装后储存,避免交叉污染。
  • 2×Hiper Tissue Direct PCR Mix:包含热启动Taq DNA聚合酶、dNTP混合物、4mM Mg2+、PCR反应增强剂、稳定剂等。
  • Proteinase K和2×Hiper Tissue Direct PCR Mix置于-20℃保存,避免反复冻融。有效期1年。



  • 为了避免样本间交叉污染,每次取样后都需要将取样器材的刃口或与样本直接接触的部位浸入2%次氯酸钠溶液或75%酒精中,反复洗刷数次进行清洗,然后用干净的纸巾擦干残余液体后再进行使用。为了试验方便,也可准备多个取样器材,在使用完后进行统一清洗,确保每一单独样本均使用的是无污染的取样器材。
  • 建议使用新鲜采取的动物组织,若为长期冷冻组织,应尽量避免反复冻融,否则会导致模板的降解,影响PCR效率。
  • 建议扩增片段长度6kb以内,以便扩增效率最佳。
  • 为了您的安全和健康,请穿实验服并佩戴一次性手套操作。
  • 本制品仅作科研用途。



  • 样品基因组DNA释放:
    • 剪取2~5mm2鼠耳或肝脏组织,或1~5mm鼠尾、或1~2个脚趾,置于1.5mL离心管中;
    • 在上述离心管中加入200μL Lysis solution和10μL Proteinase K,轻轻涡旋混匀,使得样品完全被浸润,短暂离心;
    • 在恒温孵育仪中70℃孵育10min;
    • 孵育完成后,将样品置于95℃或者沸水浴中加热5min灭活Proteinase K;
    • 将裂解产物涡旋振荡充分混匀后,12000rpm (13400×g)离心10min;
    • 将上清转移至新的离心管,-20℃保存不超过48小时或直接取上清用于后续PCR扩增。
      • 组织应尽量剪碎,以便裂解反应更顺利进行。
      • 70℃孵育,一般10min即可满足多数PCR需求。若需要的DNA量较大或样品较难裂解,可将时间延长至20~30min。组织块不需完全裂解,残余的部分在后续离心步骤中可被除去。
  • PCR反应体系:
    成分用量终浓度
    2×Hiper Tissue Direct PCR Mix25μL
    Forward Primer (10μM)2μL0.4μM
    Reverse Primer (10μM)2μL0.4μM
    裂解产物1~5μL-
    ddH2O至50μL -
    • 模板使用量:50μL体系建议初步采用2μL上清液作为模板起始投入量,若产物量较少,可适当增加模板投入量;
    • 引物终浓度:0.2~0.4μM可以得到较好结果。反应性能较差时,可在0.1~0.5μM范围内调整引物浓度;
    • 反应体系:推荐使用50μL,也可根据使用习惯调整体系体积大小;
    • 体系配制:配制好PCR反应体系,置于涡旋仪上涡旋混匀,瞬时离心将反应液集于管底。
  • PCR反应程序:
    步骤温度时间循环数
    预变性95℃5min1
    变性95℃15sec35
    退火60℃15sec
    延伸72℃3~10sec/kb
    终延伸72℃5min1
    • 退火温度:请参考引物的理论Tm值,退火温度可设置低于引物理论值2~5℃。
    • 延伸时间:1~4kb用3~10s/kb,4kb以上用20s/kb。
    • 扩增循环数:35个循环已可以扩增足量产物。
    • 电泳上样:取5~7μL扩增产物上样即可。
  • 对照反应:在PCR结果分析时,不管是阳性结果或阴性结果,如果没有对照反应,都不能确定结果是否可靠。为了便于后续实验结果的分析,建议在进行PCR时,设置阳性(小鼠基因组DNA)和阴性(通常为生理盐水)PCR对照反应以便于排除假阳性或假阴性的干扰。



常见问题可能原因解决方法
阳性对照、待测样本均无条带。PCR反应体系或反应条件不合适。使用梯度PCR摸索PCR最佳反应条件。
PCR试剂保存不当失去活性。2×Hiper Tissue Direct PCR Mix应保存于-20℃,使用时避免反复冻融。若使用频繁,可在4℃短时间存放。
引物设计问题。尝试重新设计引物进行检查。
阳性对照有目的条带,待测样本无条带或条带弱。不当储存或长期储存引起试剂活性丧失。使用新鲜的试剂。
加入组织裂解液过量。增大反应体系,或减少裂解液的用量。
样本裂解混合液保存不当或保存时间过久,DNA基因组已经降解。裂解混合液液可在4℃保存2~3天,尽量使用新制备的裂解液混合液进行PCR。
模板加入量不适合。在反应体系1~10%范围内优化模板加入量。
PCR循环数不足。增加PCR的循环数,推荐在35-40循环为佳。因为模板复杂,PCR反应要比用纯化的DNA模板多5~10个循环为佳。
非特异性扩增PCR退火温度太低,循环数、引物浓度或模板浓度太高。增加PCR退火温度,降低PCR循环数、引物浓度或模板浓度。
PCR引物错配。重新设计PCR引物。
配制PCR反应体系时温度太高或配制完成后放置时间太久。PCR反应体系的配制在低温下进行,配制完成后尽快进行PCR扩增反应。
阴性对照出现目的条带操作工具或试剂污染。实验所有试剂或器材均应高压灭菌。操作时应小心轻柔,防止将靶序列吸入加样枪内或溅出离心管外。
样本间交叉污染。每个取样器只对一个样本使用;或取完一个样本后,将取样器刃口浸入2%的次氯酸钠溶液中,反复涮洗,然后用干净的纸巾擦干残液。

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