产品货号:
JN5114
中文名称:
植物样本直接PCR Mix
英文名称:
2×DirectPlant PCR MasterMix
产品规格:
50T|200T
发货周期:
1~3天
产品价格:
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本制品是一款专门用于植物样本直接扩增的PCR Mix,包含独特的裂解缓冲液,适用于植物组织直扩、植物品种鉴定(SSR)、植物转基因检测。本制品无需预先纯化DNA,仅需使用直径约1mm的植物组织(包括新鲜、冷藏或冷冻样本)经裂解缓冲液快速处理后,所得粗裂解液即可直接作为PCR模板。PCR Mix包含定向改造的DNA聚合酶,对植物源PCR抑制物具有较强的耐受性,兼容26%~82% GC含量片段扩增。为2×预混液形式,操作时仅需加入引物与模板,简单快速,提高了检测通量与结果重现性。PCR产物3'端“A”突出,可直接用于T/A克隆载体连接,适用于植物品种鉴定、转基因检测及其他分子标记辅助选择等。

- 耐受性强:对植物中的PCR抑制物具有较强的耐受性,适用常见植物叶片及种子直接扩增。
- 快速高效:1kb以内片段,延伸速度快至1s/kb;2kb以内5s/kb,4kb以内15s/kb。
- 兼容性强:GC含量26%~82%。
- 稳定性高:37℃放置14天,性能不变。

| 组分 | 50T | 200T |
| 2×DirectPlant PCR MasterMix | 1.25mL | 1.25mL×4 |
| Plant Direct Lysis Buffer | 5mL | 20mL |
保存:-20℃,有效期1年。

- 直扩PCR Mix和裂解缓冲液需完全溶解后使用,防止离子浓度不均匀。
- 应根据实验目的选择合适的循环数,循环数过少,会造成扩增量不足。循环数过多,扩增量增加,但突变率会增加,并造成非特异性扩增。
- 根据引物Tm值设置合适的退火温度,退火温度过低,会造成非特性扩增。退火温度过高,可能扩增不到目的条带。
- 对于植物粗品扩增或直扩,建议实验开始前以纯化的基因组DNA作为阳性对照,确保体系、引物及操作无误。
- 建议在所有直接PCR检测中使用无模板对照以监控污染。

- 样品处理:
- 植物叶片:
- 直接法:推荐使用幼嫩叶片(为了获得小且统一的样品,推荐使用固定直径0.5~3mm的打孔器打取样本),从植物上取一个0.35~5mm大小的圆片,并将圆片直接放入PCR反应液(50μL)中(确保叶片浸没在液体中)。对于长片段或使用直接方案的困难样品,较小的约0.35mm大小的样品可能会得到更稳健的结果。
- 裂解法:推荐使用幼嫩叶片。从植物上取一个0.5mm~3mm大小的圆片,放入20μL植物裂解液中。用移液器吸头通过轻压管壁将叶片样品切碎。如果使用更大量的叶片组织(总量不超过1mg),则将稀释缓冲液体积增加到50μL。压碎叶片后,溶液应呈绿色。离心沉淀植物材料,将裂解液用水稀释5倍后取1μL上清液作为50μL PCR反应的模板。所需上清液体积可因所用植物材料和稀释体积而异。
- 直接法:推荐使用幼嫩叶片(为了获得小且统一的样品,推荐使用固定直径0.5~3mm的打孔器打取样本),从植物上取一个0.35~5mm大小的圆片,并将圆片直接放入PCR反应液(50μL)中(确保叶片浸没在液体中)。对于长片段或使用直接方案的困难样品,较小的约0.35mm大小的样品可能会得到更稳健的结果。
- 植物种子:
- 直接法:使用干净的手术刀,去除种皮并切下一小块种子样品(直径0.5mm~3mm)。将样品直接放入PCR反应液(50μL体积)中(确保种子浸没在液体中)。建议使用去壳的种子。对于非常小的种子(如拟南芥),使用1-2粒完整种子直接放入PCR反应液中。
- 裂解法:使用手术刀切下一小块去壳种子样品(直径0.5mm~3mm)并直接放入20μL稀释缓冲液中(确保种子样品被稀释缓冲液覆盖),用移液器吸头通过轻压管壁将样品切碎,并在室温下孵育3min。简短离心,将裂解液用水稀释5倍后取1μL上清液作为50μL PCR反应的模板。
- 直接法:使用干净的手术刀,去除种皮并切下一小块种子样品(直径0.5mm~3mm)。将样品直接放入PCR反应液(50μL体积)中(确保种子浸没在液体中)。建议使用去壳的种子。对于非常小的种子(如拟南芥),使用1-2粒完整种子直接放入PCR反应液中。
- 植物叶片:
- 常用反应体系:
成分 用量 终浓度 2×DirectPlant PCR MasterMix 25μL 1× 上游引物(10μM) 2.5μL 0.5μM 下游引物(10μM) 2.5μL 0.5μM 模板 0.5~3mm植物组织/1μL植物组织裂解稀释液 - ddH2O 至50μL - - 引物终浓度建议在0.2~1.0μM之间,特殊样本需探索引物投入量。
- 推荐PCR反应程序:
步骤 温度 时间 循环数 预变性 94℃ 5min 1 变性 94℃ 40sec 35 退火 50~60℃ 35sec 延伸 72℃ 1~15s/kb 终延伸 72℃ 10min 1 - 大多数片段引物退火温度建议为60℃;也可以根据引物Tm值±3℃的温度作为退火温度;
- 片段≤1kb,延伸速度1s/kb;片段≤2kb,延伸速度5s/kb;片段≤4kb,延伸速度15s/kb。
- 大多数片段引物退火温度建议为60℃;也可以根据引物Tm值±3℃的温度作为退火温度;

- 无产物或产量低
- 如果使用您自己引物对纯化后DNA扩增无条带:
- 优化退火温度。
- 确保循环程序按推荐执行。
- 检查引物设计。
- 优化退火温度。
- 如果使用您自己引物对纯化后DNA扩增有条带,但直接扩增无产物:
- 使用更小的样品(例如0.35mm打孔片)。
- 增加循环数。
- 对于大或困难样品及长DNA片段的扩增,使用A.3方案。
- 使用更小的样品(例如0.35mm打孔片)。
- 如果使用您自己引物对纯化后DNA扩增有条带,但直接扩增无产物:
- 将上清液用H2O稀释1:10或1:100,并在PCR中使用1μL作为模板。
- 尝试压碎和不压碎样品两种方法。
- 将样品在稀释缓冲液中室温孵育3min。
- 使用更小的样品量或增加稀释缓冲液的体积。
- 将上清液用H2O稀释1:10或1:100,并在PCR中使用1μL作为模板。
- 如果使用您自己引物对纯化后DNA扩增无条带:
- 非特异性产物-高分子量拖尾
- 确保使用的延伸时间不过长;
- 减少总循环数;
- 提高退火温度或进行温度梯度PCR;
- 降低引物浓度。
- 确保使用的延伸时间不过长;
- 非特异性产物-低分子量离散条带
- 提高退火温度或进行温度梯度PCR;
- 缩短延伸时间;
- 降低引物浓度;
- 减少总循环数;
- 设计新引物。
- 提高退火温度或进行温度梯度PCR;
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