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本制品是基于固相载体可逆化固定(SPRI)技术，使用新型核酸纯化介质包被的磁珠，配合优化的缓冲体系，在特定比例的磁珠悬液中分离纯化出特定长度范围核酸片段的产品。本制品适合用于回收、分离或纯化大于100bp的特定长度范围内的DNA或RNA片段，特别适合用于高通量测序文库构建时DNA或RNA的长度分选。通过调整本制品的用量以及通过单侧或双侧(一次或两次)分离纯化，可以实现不同长度范围DNA的分离纯化。

• 本制品特异性强、DNA结合量高。本制品DNA结合速度快、结合量高，不同大小的核酸片段可以快速进行分离纯化。而且磁珠粒径小，不易产生非特异吸附，可以快速有效去除未掺入的dNTP、引物、引物二聚体、盐和其它污染物。
  
• 本制品兼容性强。本制品不仅适用于少量样本的手工操作，也适用于高通量的自动化操作系统。
  
• 本制品分选长度范围便捷、效率高。本制品可通过调整磁珠用量从而调整分选DNA长度的范围以适应不同实验的需求。不同批次之间结果具有一致性。分选片段范围与实验预设一致，实验结果可预测。
  
• 本制品操作简单。本制品采用磁性分离，无需离心，有助于保留核酸的完整性，DNA片段纯化回收率高。
  
• 本制品安全环保。与传统的DNA回收方法相比，避免了酚、氯仿等有机溶剂的使用，更加安全。

• 尽管本制品在使用方法、片段回收率等方面与其他公司同类产品相似，但仍建议进行一定的测试和优化。
  
• 本制品避免冷冻、避免高速离心。
  
• 为保证DNA的回收率，使用前须将磁珠由4℃冰箱取出，或取所需量，使其温度平衡至室温后再使用。
  
• 分装或使用磁珠时，请适当漩涡震荡或充分颠倒以保证磁珠充分混匀。
  
• 80% (v/v)乙醇溶液推荐现用现配，否则后续使用时可能会因为乙醇的挥发而影响回收效率。
  
• DNA样品初始体积须大于100μL，不足时请用超纯水补齐至100μL。因为样品体积过小，将导致磁珠与样品孵育不均、移液误差增大，进而影响分选的准确性。
  
• 请勿长时间干燥磁珠，干燥过度将导致磁珠不可逆的聚集，从而降低洗脱效率。

• 准备工作：
  
  • 将磁珠溶液从4℃冰箱取出，适当漩涡震荡或充分颠倒以保证磁珠充分混匀，然后取出所需的量，使其平衡至室温。
    
  • 新鲜配制80% (v/v)乙醇溶液。例如分别量取8mL无水乙醇和2mL超纯水或双蒸水，混匀后即得约10mL 80% (v/v)乙醇溶液。
    • 因为乙醇和水混合后体积会发生改变，所以请勿量取8mL乙醇，加超纯水或双蒸水定容至10mL。
• DNA单侧长度分选：
  单侧长度分选法主要用于去除短片段DNA，特别是100bp或200bp以下的DNA片段，如引物或接头二聚体等，以及去除酶、dNTP和盐溶液等。一般来说，磁珠用量体积比越高，短片段DNA与磁珠的结合率越高，因此可以通过调整磁珠用量，可以去除不同长度范围的短片段DNA。
  

  Size-selection of DNA	Bead Volumes
  ≥1000bp	0.5X
  ≥300bp	1.0X
  ≥200bp	1.2-1.5X
  ≥100bp	2.0-3.0X

  • 此磁珠用量为参考用量，也可参考已使用的方法并根据实际测试结果进行适当的调整。表中“X”表示DNA样品体积。
    例如：DNA样品体积为100μL，如果需要纯化≥1000bp的DNA片段，则磁珠用量为0.5X = 0.5×100μL = 50μL。
    
  • 此处的长度范围是指大部分DNA片段范围，仍然可能含有少量低于该长度的短片段。
  • 轻柔涡旋震荡或上下颠倒以保证磁珠充分混匀，参考上表在DNA样品溶液中加入相应体积磁珠。
    
  • 轻柔涡旋震荡或移液器吹打10次混匀，室温孵育5min。
    
  • 将离心管短暂低速离心后置于磁力架中分离5min，待溶液澄清后，小心移除上清。
    
  • 保持离心管始终处于磁力架中，加入200μL新鲜配制的80% (v/v)乙醇溶液漂洗磁珠，室温孵育30秒，小心移除上清。
    
  • 重复步骤d一次。
    
  • 保持离心管始终处于磁力架中，打开离心管盖，室温干燥至磁珠刚刚出现龟裂(约5～10min)。
    
  • 将离心管从磁力架中取出，加入适量超纯水或双蒸水(≥20μL)，漩涡振荡或使用移液器轻轻吹打以充分混匀。
    
  • 室温孵育5min。
    
  • 将离心管短暂低速离心后置于磁力架中分离5min，待溶液澄清后，小心吸取上清至洁净的离心管中，即完成DNA片段的纯化。使用本制品进行DNA片段的纯化效果参考图2。
    
    图2.BalbMag DNA分选磁珠(≥100bp)用于DNA片段纯化(单侧长度分选法)的效果图。100μL的样品(含总量为2μg的DNA，大小为100-10,000bp)，分别加入0.5X-3X体积的分选磁珠，进行DNA片段纯化。20μL纯化产物加入4μL 6×DNA上样缓冲液，使用1%琼脂糖凝胶进行电泳检测。实际效果会因样品种类、检测仪器等的不同而存在差异，图中效果仅供参考。
• DNA双侧长度分选：
  二代测序的DNA文库一般要求长度在300～500bp之间，所以需要去除大片段DNA和非常小的DNA片段，此时可以通过双侧长度分选(双轮分选法)对DNA片段进行分选。通常第一轮分选的目的是去除大片段DNA，所以也被称为右侧清除(Right-side clean-up)；第二轮分选的目的是去除小片段DNA，所以也被称为左侧清除(Left-side clean-up)。通过两轮分选，可以把DNA片段控制在适当的长度范围内。下表为DNA长度分选的参考条件。
  

  Size-selection of DNA	200～300bp	300～400bp	400～500bp	500～600bp	600～1000bp
  Bead Volumes for Round 1	0.85X	0.7X	0.65X	0.58X	0.5X
  Bead Volumes for Round 2	(0.15~0.3)Y	(0.05~0.2)Y

  • 此磁珠用量为参考用量，推荐参考已使用的方法并根据实际测试结果进行适当的调整，特别是第二轮的磁珠用量。表中“X”表示DNA样品体积，“Y”表示DNA样品体积和第一轮磁珠用量之和。例如：DNA样品体积为100μL，如果需要分选200～300bp的DNA片段，则第一轮磁珠用量为0.85X = 0.85×100μL = 85μL，第二轮磁珠用量V2为(0.15~0.3)×(100μL+85μL) = 27.75～55.5μL；
  • 轻柔涡旋震荡或上下颠倒以保证磁珠充分混匀，参考上表在DNA样品溶液中加入第一轮磁珠用量(Bead Volumes for Round 1)。
    
  • 轻柔涡旋震荡或移液器吹打10次混匀，室温孵育5min。
    
  • 将离心管短暂低速离心后置于磁力架中分离5min，待溶液澄清后，小心转移上清到新的离心管中。
    • 转移上清时，切勿将上清全部吸出，请残留2μL于管底，避免吸到磁珠从而影响DNA长度分选效果。
  • 参考上表向上清中加入第二轮磁珠用量(Bead Volumes for Round 2)。
    
  • 轻柔涡旋震荡或移液器吹打10次混匀，室温孵育5min。
    
  • 将离心管短暂低速离心后置于磁力架中分离5min，待溶液澄清后，小心移除上清。
    
  • 保持离心管始终处于磁力架中，加入200μL新鲜配制的80% (v/v)乙醇溶液漂洗磁珠，室温孵育30秒，小心移除上清。
    
  • 重复步骤g一次。
    
  • 保持离心管始终处于磁力架中，打开离心管盖，室温干燥至磁珠刚刚出现龟裂(约5～10min)。
    
  • 将离心管从磁力架中取出，加入适量超纯水或双蒸水(≥20μL)，轻柔涡旋震荡或使用移液器轻轻吹打以充分混匀。
    
  • 室温孵育5min。
    
  • 将离心管短暂离心后置于磁力架中分离5min，待溶液澄清后，小心吸取上清至洁净的离心管中，即完成双侧法DNA长度分选。可取少量分选后的样品电泳检测DNA片段长度，然后-20℃保存。使用本制品进行DNA长度分选的效果参考图3。
    
    图3.DNA分选磁珠(≥100bp)用于DNA长度分选(双侧分选法)的效果图。100μL的样品(含总量为1μg的DNA，大小为100～10000bp)，按照上表加入分选磁珠，进行双侧法DNA长度分选。20μL分选产物加入4μL 6×DNA上样缓冲液，使用1%琼脂糖凝胶进行电泳检测。实际效果会因样品种类、检测仪器等的不同而存在差异，图中数据仅供参考。