产品目录

本制品是一种采用环保脱蜡方式去除石蜡后磁珠法提取DNA的试剂盒，获得的DNA可以应用于PCR、qPCR或基因组学研究等下游实验。

福尔马林固定石蜡包埋(FFPE)常应用于癌症等疾病研究中保存离体组织的形态学和组织学结构，以便于运输和储存，是病理样品长期保存的主要方法之一。组织样品经福尔马林固定时，组织内细胞中的核酸和蛋白质等分子间随机交联，核酸出现片段化，因此难以获得高质量核酸。本试剂盒采用环保脱蜡法去除石蜡，以特殊的裂解条件释放FFPE组织样本中的DNA分子，最大程度地降低了福尔马林固定时组织内细胞中DNA与其它分子交联的不利影响，经本试剂盒提取获得的DNA纯度高、完整性好、质量稳定。

• 本试剂盒抽提获得的石蜡包埋组织样品基因组DNA纯度高。通过本试剂盒抽提获得的DNA A260/A280的范围通常在1.6～1.9之间。
  
• 本试剂盒使用安全、高效。通过特殊的磁珠进行DNA分离纯化，能有效避免常规方法抽提DNA时使用的酚、氯仿等有毒有害有机试剂。
  
• 本试剂盒操作快速、便捷。采用磁珠纯化，无需繁琐的DNA沉淀和离心步骤，纯化DNA操作过程仅需约15分钟即可完成。和国外同类产品相比，所需操作步骤和操作时间基本一致。百奥莱博同时提供石蜡包埋组织基因组DNA提取试剂盒。

• BalbMag磁珠长期不使用时，可以4℃保存，4℃可以保存更长时间。蛋白酶K室温(15～25℃)存放一周，活力无明显下降。
  
• 如果希望获得更高质量的DNA，宜尽量使用新鲜固定和包埋的组织样品。拿到组织样品后尽快在4～10%福尔马林中固定，固定时间最好在8～24小时之间或更短时间，长时间固定会使DNA断裂更为严重。
  
• 样品包埋前应确保彻底脱水，残留的甲醛可能抑制蛋白酶K的消化等相关实验步骤。
  
• 本试剂盒抽提DNA依赖于样品类型、储存时间以及固定条件。样品固定时间和保存时间过长(＞1年)易破坏DNA完整性，无法抽提出长片段。
  
• 本试剂盒的标准操作步骤提取得到的总DNA含有少量RNA，但如果按照可选步骤加入自备的RNase A，就可以获得不含RNA的高纯度总DNA。。
  
• 温度较低时样品裂解液A或样品裂解液B中可能会有沉淀产生，属正常现象。使用前必须检查一遍，如有沉淀，55℃水浴孵育使沉淀溶解，混匀后使用。
  
• 第一次使用前小包装洗涤液I需添加17mL无水乙醇，洗涤液II需添加39mL无水乙醇，混匀，并在瓶上做好标记。
  
• 本试剂盒须将FFPE样品56℃和90℃孵育。
  
• 使用本试剂盒须提前备好无水乙醇和异丙醇。
  
• 除特别说明外，每次Vortex应控制在5～10秒左右。
  
• 本试剂盒需自备磁分离装置。
  
• 磁珠在静置后会发生沉降，使用前一定要适当涡旋震荡或颠倒数次至充分混匀。
  
• 磁分离前应适度震荡离心管使磁珠充分分散后再靠近磁场。如果出现磁珠挂壁现象，可以在磁珠聚集后晃动管内液体，使挂壁的磁珠流下。
  
• 请使用推荐的样品量。如果样品量过大，可能造成磁珠聚集，会影响洗涤进而影响抽提获得的DNA纯度。发生磁珠聚集时，洗涤时需尽量分散磁珠，这样可有效改善抽提效果。如果发生磁珠聚集现象，建议在后续实验中适当减少样品用量。
  
• 本试剂盒所有操作均在室温进行，操作时无需冰浴。

本试剂盒提取DNA的实验流程如图1所示。首先使用环保的脱蜡剂和蛋白酶K将FFPE样品脱蜡、消化，释放出来的基因组DNA在特定条件下与磁珠特异性结合。在外界磁场(如磁分离架)的作用下，磁珠与相应溶液可以快速高效地分离。随后通过三次洗涤去除各种杂质，最后通过洗脱液把DNA洗脱下来。

• 得到的基因组DNA经RNase A处理。实际结果会因样品、实验条件、检测仪器等的不同而存在差异，图中效果仅供参考。

• 样品处理：
  
  • 石蜡包埋组织蜡块：手术刀切或刮取约10～25mg的组织样品(尽量去除组织周围的石蜡块)。
    
    • 较小的组织碎片会使裂解速度加快，裂解效率提高。
  • 石蜡包埋组织切片：取5～8张的石蜡切片(5～10μm厚，表面积小于1×1cm2)。
    
    • 如果样品表面暴露于空气中，尽量避免使用。
  • 福尔马林固定组织：取10～25mg福尔马林固定液中的组织，用手术刀充分切碎后，置于1.5mL离心管中，加入500μL的PBS(pH7.4，无酶无菌)，Vortex震荡混匀，12000×g离心1分钟后充分去除上清，再重复清洗2次，然后从步骤2b开始操作。
• 脱蜡和裂解：
  
  • 将石蜡块样品或者石蜡切片置于1.5mL离心管中，加入600μL的脱蜡剂，剧烈Vortex 30秒，以充分脱蜡。
    
    • 福尔马林固定液中的组织样品无需加脱蜡剂，直接转入步骤2b开始操作；如果石蜡样品过多，可以将脱蜡剂用量增加至1mL。
  • 加入180μL样品裂解液A和20μL蛋白酶K，Vortex混匀，56℃金属浴或水浴孵育1小时或直至样品完全裂解。
    
    • 裂解过程中可多次从金属浴中取出离心管颠倒混匀以促进裂解。裂解的时间因组织不同而有所不同，通常可在1～3小时内完成。为方便起见，可以直接过夜裂解，过夜裂解对DNA抽提效果通常无负面影响。
  • 将完全裂解的组织样品置于90℃孵育1小时，之后短暂离心使盖子上的蒸发液体回到管中。
    
    • 90℃孵育对解开DNA与其它分子的交联至关重要，但是必须严格控制孵育的温度和时间，否则可能产生更多的DNA碎片，因此应先将金属浴或水浴加温至90℃再放入样品进行孵育。
  • 将离心后的离心管室温静止5分钟，用吸头缓慢穿过上层脱蜡剂，吸取下层的澄清液体(约180μL)至新的离心管中。
    
  • 清除RNA(可选做)。如果希望获得不含RNA的高纯度DNA，加入2μL的RNase A(100mg/mL，不含DNase)，Vortex混匀。室温放置2分钟后，进行下一步操作。
    
    • 如果残余的少量RNA对后续下游实验没有干扰，可以不进行本步实验操作，直接进入步骤2f。
  • 向上述新的离心管中加入200μL样品裂解液B，Vortex混匀；再加入400μL异丙醇，Vortex混匀。
    
    • 加入样品裂解液B后可能会产生白色沉淀，需立即Vortex混匀，但不会干扰后续实验；加入异丙醇后也可能产生白色沉淀，必须Vortex充分混匀，后续步骤中必须把白色沉淀和溶液全部用于和磁珠的结合，沉淀不会影响抽提效果。
• 纯化DNA：
  
  • 向步骤2f中的混合溶液加入20μL BalbMag磁珠悬液(使用前务必混匀)，轻柔混匀后，室温放置3～5分钟。将离心管置于磁力架的磁场中，待磁珠完全聚集后，小心吸除残液。
    
    • 磁珠在使用前一定要涡旋或震荡混匀。如有必要，可适当增加磁珠用量或延长结合时间以提高得率。
    • 必须将步骤2f中的溶液和白色沉淀全部用于和磁珠结合，否则会严重影响抽提效果！
  • 加入500μL洗涤液Ⅰ，轻柔震荡使磁珠分散开，颠倒2次后将离心管置于磁力架的磁场中，待磁珠完全聚集后，尽量吸净残液。
    
  • 加入600μL洗涤液Ⅱ，轻柔震荡使磁珠分散开，颠倒2次后将离心管置于磁力架的磁场中，待磁珠完全聚集后，尽量吸净残液。
    
  • 重复步骤3c一次。
    
  • 将离心管室温放置5～10分钟，或置于37℃鼓风烘箱5分钟，确保残留的乙醇等微量液体完全挥发。
    
  • 加入50～100μL洗脱液，轻柔震荡使磁珠悬于溶液中，室温孵育3～5分钟，其间甩动离心管1～2次。将离心管置于磁场中，待磁珠完全聚集后，小心吸取溶液至新离心管中，置于-20℃保存。所得溶液即为纯化的总DNA。
    
    • 如果有必要，可以使用去离子水洗脱DNA，洗脱液的pH对洗脱效率有很大影响，使用去离子水洗脱时应保证其pH值在7.0～8.5之间。使用较小体积的洗脱液可以使获得的总DNA的浓度较高，但洗脱下来的DNA量相对较少。如果对于获得较多量的DNA非常重要，可以在第一次洗脱后，再用同体积洗脱液重复洗脱一次，第二次洗脱可增加DNA洗脱量，但会降低洗脱DNA的浓度。或将洗脱后的得到溶液再次加回到原磁珠再洗脱一次。经65℃预热过的洗脱液可增加DNA的洗脱量。