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本试剂盒采用可以特异性结合DNA的离心吸附柱和独特的缓冲液系统，可从多种动物源性植物饲料中提取基因组DNA。离心吸附柱中采用的硅基质材料为新型材料，高效、专一吸附DNA，可有效去除杂质蛋白及细胞中其他有机化合物。提取的基因组DNA片段大，纯度高，质量稳定可靠。使用本试剂盒提取的基因组DNA可适用于包括酶切、PCR在内的分子生物学实验。

• 简单快速：1小时内即可获得高质量的基因组DNA。
  
• 适用广泛：适用于动物源性植物饲料、多种动物细胞和动物组织等。
  
• 纯度高：获得的DNA可直接用于PCR、酶切等分子生物学实验。

• 若溶液产生沉淀，必要时可在37℃水浴中预热10min以溶解沉淀，并摇匀后使用，不影响实验结果。
  
• 所有离心步骤均为室温下离心。
  
• 使用前请先在缓冲液GD和漂洗液PW中加入无水乙醇，加入体积请参照瓶上的标签。

• 处理材料：50mg研磨粉碎的动物源性饲料加入320μL缓冲液GA，振荡至彻底悬浮。
  
  • 如果需要去除RNA，可加入4μLRNase A溶液，振荡15sec，室温放置5min。
• 加入20μL Proteinase K溶液，混匀。在65℃放置20～30min，其间混匀样品2～3次。
  
• 加入340μL缓冲液GB，充分颠倒混匀，65℃放置10min，其间混匀样品2～3次。
  
  • 如果第2、3步中65℃温浴期间离心管底出现沉淀，请将沉淀振荡至彻底悬浮后再进行65℃水浴操作。
• 12000rpm （~13400×g)离心2min，取440μL上清至新管中。
  
  • 若所取上清中有可见悬浮颗粒，则无水乙醇加到上清体积的1/2。例如：取500μL上清，加入250μL无水乙醇。
• 向上清中加入220μL无水乙醇，充分颠倒混匀6～8次，此时可能会出现絮状沉淀。
  
  • 若所取上清体积小于或大于440μL，则无水乙醇应加到上清体积的1/2。例如：取500μL上清，加入250μL无水乙醇。
• 将上一步所得溶液和絮状沉淀全部加入一个吸附柱CB3中（吸附柱放入收集管中），12000rpm（~13400×g)离心2min，倒掉废液，将吸附柱CB3放回收集管中。
  
  • 离心时间请不要少于2min，否则可能会导致吸附柱堵塞，如果离心时出现吸附柱堵塞情况时，请再次12000rpm（~13400×g)离心2min。
• 向吸附柱CB3中加入500μL缓冲液GD（使用前请先检查是否已加入无水乙醇），12000rpm（~13400×g)离心30sec，倒掉废液，将吸附柱CB3放回收集管中。
  
• 向吸附柱CB3中加入600μL漂洗液PW（使用前请先检查是否已加入无水乙醇），12000rpm（~13400×g)离心30sec，倒掉废液，将吸附柱CB3放入收集管中。
  
• 重复操作步骤8。
  
• 将吸附柱CB3放回收集管中，12000rpm（~13400×g)离心2min，倒掉废液。将吸附柱CB3置于室温放置数分钟，以彻底晾干吸附材料中残余的漂洗液。
  
  • 这一步的目的是将吸附柱中残余的漂洗液去除，漂洗液中乙醇的残留会影响后续的酶反应（酶切、PCR等）实验。
• 将吸附柱CB3转入一个干净的离心管中，向吸附膜的中间部位悬空滴加50～200μL洗脱缓冲液TE，室温放置2～5min，12000rpm（~13400×g)离心2min。
  
  • 为增加基因组DNA的得率，可将离心得到的溶液再加入吸附柱CB3中，室温放置2min，12000rpm（~13400×g)离心2min。洗脱缓冲液体积不应少于50μL，体积过小影响回收效率。洗脱液的pH值对于洗脱效率有很大影响。若用ddH2O做洗脱液应保证其pH值在7.0～8.5范围内，pH值低于7.0会降低洗脱效率；且DNA产物应保存在-20℃，以防DNA降解。

• 得到的基因组DNA片段的大小与样品保存时间、操作过程中的剪切力等因素有关。回收得到的DNA片段可用琼脂糖凝胶电泳和紫外分光光度计检测浓度与纯度。
  
• DNA应在OD₂₆₀处有显著吸收峰，OD₂₆₀值为1相当于大约50μg/mL双链DNA、40μg/mL单链DNA。
  
• OD₂₆₀/OD₂₈₀比值应为1.7～1.9，如果洗脱时不使用洗脱缓冲液，而使用ddH2O，比值会偏低，因为pH值和离子存在会影响光吸收值，但并不表示纯度低。