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本试剂盒可以从琼脂糖凝胶中快速可靠地纯化得到高质量双链DNA。本试剂盒用很少的孵育和离心时间完成结合、清洗、洗脱流程，整个纯化过程在15分钟内完成。凝胶溶解液DB用来消化琼脂糖凝胶块，保证样本在高盐条件下将DNA结合在纯化柱上。漂洗液WB确保DNA结合染料、电泳缓冲液盐离子和胶上样缓冲液染料都去除干净。

本试剂盒纯化得到的DNA可以直接用于限制性酶切、DNA测序、连接和其他酶操作实验。

• 洗脱体积低至6μL。
  
• 独特的离心柱设计消除了缓冲液和盐的残留。
  
• 快速方便的实验方案大大节省了时间。
  
• 纯化过程无需添加异丙醇。

• 使用前向5mL漂洗液WB中加入20mL乙醇(≥95%)。
  
• 所有离心步骤均在16000g(~13000rpm)下进行。
  
• 如果使用DNA片段≥10kb，将适量的洗脱缓冲液EB预热至50℃。
  
• DNA纯化柱的容量为800μL。

• 切下一块含待纯化DNA片段的琼脂糖凝胶，1.5mL离心管中，并称重，尽量不要超过150mg。
  
• 加入4倍体积的凝胶溶解液DB(例如，每100mg琼脂糖400μL凝胶溶解液DB)。
  
• 50℃温育，直至溶胶完全溶解(通常需要5～10分钟)。
  注：对于大于8kb的DNA片段，可在凝胶溶解后加入1.5倍凝胶体积的水(例如，100mg凝胶，加150μL水)。
  
• 把DNA纯化柱放入收集管中，然后将溶解后的凝胶离心过柱30～60sec，弃掉收集管中溶液。
  
• 将DNA纯化柱重新插入收集管，加入200μL 漂洗液WB并离心1分钟，弃掉收集管中溶液。
  
• 重复上述漂洗步骤1次。
  
• 将DNA纯化柱转移至干净的离心管中，向柱子中心加入至少6μL洗脱缓冲液EB，等待1分钟，然后离心1分钟，得到洗脱后的DNA。
  注：
  ① 典型洗脱体积为6～20μL。无核酸酶水（pH7～8.5）也可用于洗脱DNA。
  ② 使用更多的洗脱缓冲液EB，产率可能会略有增加，但DNA的浓度会降低。
  ③ 对于较大片段的DNA(≥ 10kb），使用前可将洗脱缓冲液EB加热至50℃可提高产率。
  ④ 应注意确保洗脱缓冲液EB被加入到基质中心而不是柱壁上，以最大限度地提高洗脱效率。