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本试剂盒采用独特的离心吸附柱纯化酶切、PCR等反应液中的DNA片段，同时除去蛋白质、其他有机化合物、无机盐离子及寡核苷酸引物等杂质。使用本试剂盒可回收100bp～10kb大小的DNA片段，回收率可达80%以上(小于100bp和大于10kb的DNA片段回收率为30～50%)。使用本试剂盒回收的DNA可适用于各种常规操作，包括酶切、PCR、测序、文库筛选、连接和转化等试验。

• 使用前请先在漂洗液中加入无水乙醇，加入体积请参照瓶体上的标签。
  
• 本试剂盒适用于无选择性地回收溶液中所有DNA片段(可去除50bp以下的小片段)，如需选择性地回收特定片段、同时去除其他不同大小片段，请选择琼脂糖凝胶回收试剂盒。
  
• 回收率与初始DNA量和洗脱体积有关，初始量越少、洗脱体积越小，回收率越低。
  
• 回收小于100bp和大于10kb的DNA片段时，可适当延长吸附和洗脱的时间。

• 估测PCR反应液或酶切反应液的体积，向其中加入4倍体积的结合液，充分混匀。如PCR反应体系为100L，则加入400μL结合液。如果反应液的体积较小，建议用水稀释反应液或酶切反应液至100μL，然后与400μL结合液混合。
  
• 将上一步所得溶液加入一个吸附柱中(吸附柱放入收集管中)，室温放置2分钟，12000rpm离心30～60秒，倒掉收集管中的废液，将吸附柱重新放入收集管中。
  
  吸附柱最大容积为800μL，若样品体积大于800μL可分批加入。
• 向吸附柱中加入600μL漂洗液(使用前请先检查是否已加入无水乙醇)，12000rpm离心30～60秒，弃废液，将吸附柱放入收集管中。
  
• 向吸附柱中加入600μL漂洗液，12000rpm离心1min，弃废液，将吸附柱放入收集管中。
  
• 12000rpm离心2min，尽量除去漂洗液。将吸附柱敞口置于室温或50℃温箱放置数分钟，目的是将吸附柱中残余的漂洗液去除，防止漂洗液中的乙醇影响后续的实验。
  
• 将吸附柱放入一个干净的离心管中，向吸附膜中央悬空滴加30～100μL经65～70℃水浴预热的洗脱液，室温放置2min，12000rpm离心2min，收集DNA溶液。
  
  • 为了增加回收效率，可将得到的收集液重新加入吸附柱中，12000rpm再次离心2min。
    
  • 洗脱缓冲液体积不应少于30μL，体积过小影响回收效率。
    
  • 洗脱液的pH值对于洗脱效率有很大影响，若用水做洗脱液应保证其pH值在7.0～8.5之间。
• DNA产物置于-20℃保存。