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本试剂盒采用可以特异性结合DNA的离心吸附柱和独特的缓冲液系统，提取全血基因组DNA。离心吸附柱中采用的硅基质材料为本公司特有新型材料，能够高效、专一吸附DNA，可最大限度去除杂质蛋白及细胞中其他有机化合物。提取的基因组DNA片段大，纯度高，质量稳定可靠。使用本试剂盒提取的基因组DNA可用于各种常规操作，包括酶切、PCR、文库构建、Southern杂交等实验。

• 使用前请先在漂洗液中加入无水乙醇，加入体积请参照瓶体上的标签。需自备无水乙醇（每瓶需要单独加入45mL无水乙醇）。
  
• 本试剂盒置于室温（15～25℃）干燥条件下可保存12个月，更长时间的保存可置于2～8℃。
  
• 常用的血液抗凝剂有EDTA、ACD和肝素等，需注意的是，如欲制备大分子量血液基因组DNA，可优先考虑使用ACD抗凝。一般不使用肝素抗凝，因为用肝素抗凝的血液提取的基因组DNA进行PCR扩增时，有PCR扩增抑制现象。
  
• 样品应避免反复冻融，否则会导致提取的DNA片段较小且提取量也下降。
  
• 如果试剂盒中的溶液出现沉淀，可在65℃水浴中重新溶解后再使用，不影响效果。
  
• 绝大多数哺乳动物全血中的红细胞无核，故在提取基因组DNA时需去除不含DNA的无核红细胞，以免影响白细胞裂解和DNA释放。如果处理的血样为禽类、鸟类、两栖类或更低级生物的血液，其红细胞为有核细胞，因此处理量减少为5～20μL，不需要再用红细胞裂解液来裂解红细胞。
  
• 洗脱缓冲液的体积最好不少于50μL，体积过小会影响回收效率；洗脱液的pH值对洗脱效率也有影响，若需要用水做洗脱液应保证其pH值在8.0左右（可用NaOH将水的pH值调至此范围），pH值低于7.0会降低洗脱效率。

• 样品的处理（本制品适用于处理新鲜的或已经添加抗凝剂的100～500μL血液样品）：
  
  • 在血液中加入2倍体积的红细胞裂解液，充分颠倒混匀，12000rpm离心1min，小心吸去上清，沉淀为白色或淡红色，如果裂解不彻底，可重复上述步骤一次。
    
  • 如果处理的血样为禽类、鸟类、两栖类或更低级生物的血液，其红细胞为有核细胞，因此处理量为5～20μL，不需要再用红细胞裂解液处理，直接加500μL溶液A，振荡至彻底混匀。
• 向沉淀中加500μL溶液A，振荡或者用移液器吹打至彻底混匀，65℃水浴10min，期间可颠倒离心管混匀数次，直至溶液较为清澈看不见明显细胞为止。
  
• 待离心管降至室温后向液体中加入2μL RNase A、20μL蛋白酶K，充分颠倒混匀，室温放置10min。
  
• 加入500μL溶液B，充分颠倒混匀，此时会出现白色沉淀，65℃水浴5min，4℃，12000rpm离心5min，小心吸取下层液体（不要吸到上层或漂浮不溶物），转移到干净离心管中，若还
  有沉淀物，可再次离心。
  
• 加入0.7倍体积无水乙醇，充分颠倒混匀，此时可能会出现絮状沉淀，不影响DNA的提取，可将溶液和絮状沉淀都加入吸附柱中。
  
• 4℃，12000rpm离心1min，弃废液，将吸附柱放入收集管中。
  
• 向吸附柱中加入600μL漂洗液（使用前请先检查是否已加入无水乙醇），4℃，12000rpm离心1min，弃废液，将吸附柱放入收集管中。
  
• 向吸附柱中加入600μL漂洗液，4℃，12000rpm离心1min，弃废液，将吸附柱放入收集管中。
  
• 4℃，12000rpm离心2min，将吸附柱敞口置于室温或50℃温箱放置数分钟，目的是将吸附柱中残余的漂洗液去除，否则漂洗液中的乙醇会影响后续的实验如酶切、PCR等。
  
• 将吸附柱放入一个干净的离心管中，向吸附膜中央悬空滴加50～100μL经65℃水浴预热的洗脱液，室温放置5min，12000rpm离心2min。
  
• 离心所得洗脱液可再加入吸附柱中，12000rpm离心2min，即可得到高质量的基因组DNA。