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本试剂盒用于快速的从酵母中提取基因组DNA。在针对酵母细胞特点配制的酵母裂解液作用下，酵母细胞被裂解释放出基因组DNA，然后蛋白沉淀液选择性沉淀去除蛋白，最后纯净的基因组DNA通过异丙醇沉淀并重溶解于DNA溶解液。提取得到的DNA可直接用于PCR，Southern-blot和各种酶切反应以及文库构建。

• 不需要使用有毒的苯酚、氯仿等试剂。
  
• 快速，简捷，整个过程可在1个小时内完成。
  
• 结果稳定，产量高（比离心柱型的产量高一倍以上），OD260/OD280典型的比值达1.7～1.9，长度可达50～150kb。

• 环境温度低时酵母裂解液中某些去污剂成份会析出出现浑浊或者沉淀，可在37℃水浴加热几分钟，轻轻旋摇，即可恢复澄清，不要剧烈摇晃，以免形成过量的泡沫。
  
• 蛋白沉淀液可能出现析出和沉淀，可以在37℃水浴几分钟帮助重新溶解，如果不能完全溶解，也不影响使用效果，直接取用上层溶液即可。
  
• 避免试剂长时间暴露于空气中产生挥发、氧化、pH值变化，各溶液使用后应及时盖紧盖子。

• 吸取60～70mL酵母培养物到一个100mL离心管；2500×g离心2分钟，尽可能弃上清，必要时候可以用枪吸去。
  
• 高速涡旋振荡，打散重悬酵母细胞团。
  
• 加入20mL酵母裂解液，涡旋振荡混匀，或者用1毫升的枪头反复吹打混匀。酵母细胞的重悬分散对下一步裂解非常重要，必须充分分散重悬。
  
• 将裂解物放置在70℃水浴15～30分钟。如果产量低，可以适当提高水浴温度和延长水浴时间，中间可以涡旋振荡混匀几次帮助裂解。
  
• 冰上至少5分钟使回复到室温。
  
• 在回复到室温的裂解物内加入6.8mL蛋白沉淀液后，在涡旋振荡器上高速连续振荡混匀25秒。混匀后可能见到一些小的蛋白团块。冰浴5分钟。
  
• 2500×g(可根据需要调整加大离心力)离心5分钟。这时应该可以见到管底蛋白沉淀，也可能见到一些蛋白沉淀漂浮在液体表面。
  
• 小心缓慢吸取上清到一个新的100mL离心管中，不要吸到沉淀。吸取上清时，注意不要吸到管底的和漂浮在液体表面的蛋白沉淀。如果不小心将蛋白沉淀转入新的离心管中，可再次离心2分钟后取上清。
  
• 加入等体积的室温异丙醇，颠倒30次混匀或者直到出现絮状DNA沉淀（或者白色浑浊沉淀）。
  
• 2500×g离心5分钟(可根据需要调整加大离心力)，在管底可以见到白色的DNA沉淀块，倒弃上清。
  
• 加入20mL 70％乙醇，颠倒几次漂洗DNA沉淀，2500×g离心2分钟，倒去上清（注意不要把DNA沉淀倒掉了），倒置后在吸水纸上轻敲几下以控干残留乙醇，还可以用枪头小心吸掉管底沉淀周围和管壁的残留乙醇，空气晾干沉淀几分钟。注意不要干燥过头，否则DNA极其难溶；也不能残留太多乙醇，否则乙醇可能抑制下游如酶切反应。
  
• 加入1～3mL DNA溶解液重新水化溶解DNA沉淀，轻弹管壁混匀，可以放置在65℃温育30～60分钟（不要超过一小时），也可以在室温或者4℃放置过夜来重新水化DNA。期间不时的轻弹管壁帮助重新水化DNA。
  
• 加入0.5～1mL RNase A（10mg/mL），颠倒混匀，37℃温育30～60分钟去除残留RNA。该步骤主要作用为去除残留的RNA，如果残留RNA多，可以适当延长时间或者增加RNase A用量。如果残留RNA不影响实验，可略去该步骤。如果残留的RNA酶可能影响实验，也可以用等体积酚/氯仿抽提去除，然后用标准的乙醇沉淀回收DNA。
  
• DNA可以存放在2～8℃，如果要长时间存放，可以放置在-20℃。