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本试剂盒适用于从各种动植物细胞/组织中快速提取基因组DNA。样品研磨或者匀浆后加入细胞核裂解液，首先在强去污剂或者和蛋白酶K协同作用下裂解细胞释放出基因组DNA，接着加入RNase A去除RNA，然后蛋白沉淀液选择性沉淀去除蛋白，最后纯净的基因组DNA通过异丙醇沉淀并重溶解于DNA溶解液。提取得到的基因组DNA可直接用于PCR，Southern-blot和各种酶切反应以及文库构建。

• 安全无毒：不需要使用有毒的苯酚、氯仿等试剂。
  
• 快速简捷：组织样品操作整个过程可在1个小时内完成。
  
• 产量高：比离心柱型的产量高一倍以上。
  
• 质量高：提取得到的DNA OD260/OD280典型的比值达1.7～1.9，长度可达50～150kb。

• 环境温度低时细胞核裂解液中某些去污剂成份会析出出现浑浊或者沉淀，可在37℃水浴加热几分钟，轻轻旋摇，即可恢复澄清，不要剧烈摇晃，以免形成过量的泡沫。
  
• 蛋白沉淀液可能出现析出和沉淀，可以在37℃水浴几分钟帮助重新溶解，如果不能完全溶解，也不影响使用效果，直接取用上层溶液即可。
  
• 避免试剂长时间暴露于空气中产生挥发、氧化、pH值变化，各溶液使用后应及时盖紧盖子。

• 所有的离心步骤均在室温完成，使用转速可以达到13000rpm的传统台式离心机，如Eppendorf 5415C或者类似离心机。
  
• 用户需自备异丙醇、70％乙醇、PBS(用于细胞)、液氮研钵/或匀浆器(用于组织）、0.5M EDTA和蛋白酶K(用于鼠尾)、水浴箱。
  
• 开始实验前将需要的水浴先预热好备用。
  
• 本试剂盒为溶液型，可以很容易的按照比例扩大或者缩小每次处理的组织细胞量，请联系我们索取其它处理量的操作手册。

• 组织培养细胞
  
  • 收集细胞到一个1.5mL离心管；对于贴壁细胞，应该先用胰蛋白酶消化后吹打下来收集。
    
  • 13000rpm离心10秒，使细胞沉淀下来，弃上清，留下细胞团和大约10～50μL残留的液体。
    
  • 加200μL PBS重悬洗涤细胞，重复上一步骤，高速涡旋振荡重悬细胞团。
    
  • 对于细胞核裂解液裂解效果不好的细胞系（例如PC12细胞），在做下一步骤前，应该做几次冻融循环：冻于液氮后，在95℃水浴融化，重复4次。
    
  • 加入600μL细胞核裂解液，用大口径的枪头（剪去枪头尖）轻柔吹打裂解细胞直至看不见细胞团块。
    
  • 接操作步骤项下4。
• 动植物组织（例如鼠肝脑或者植物叶片）
  
  • 600μL冰预冷的细胞核裂解液加入10～20mg新鲜或者解冻的组织，用小匀浆器匀浆10秒钟，将裂解物转入1.5mL离心管。另一种方法：在液氮中研磨10～20mg组织（植物叶片可以适当多加如用40mg）成细粉后，转入装有600μL冰预冷的细胞核裂解液的1.5mL离心管，用大口径枪头吹打混匀。
    
  • 将裂解物放置在65℃水浴15～30分钟。
    
  • 接操作步骤项下4。
• 动物组织（鼠尾）
  
  • 处理样品前，先加入120μL 0.5M EDTA（pH8.0）到装有500μL细胞核裂解液的1.5mL离心管中，混匀后冰预冷备用。
    
  • 将鼠尾在液氮中研磨成细粉或者将0.5-1.0cm的鼠尾巴尖（一定要剪0-2cm范围内的尾巴尖，否则裂解效果不好）剪碎放入一个1.5mL离心管后，加入600μL上步配好的EDTA/细胞核裂解液。
    
  • 加入17.5μL蛋白酶K溶液(20mg/mL)，颠倒混匀。
    
  • 55℃水浴放置过夜，期间轻柔的振荡几次帮助裂解。或者在一个摇床上55℃水浴3小时，每一个小时高速涡旋振荡混匀一次。确保鼠尾裂解完全（没剪碎的鼠尾，可能不能完全裂解，产量会低一些）。
• 加入1.8μL RNase A（10mg/mL）至裂解物中，即RNase A终浓度30μg/mL，颠倒混匀后37℃温育15～30分钟去除残留RNA。然后室温冷却至少5分钟或者冰浴使回复到室温。
  
• 在回复到室温的裂解物内加入200μL蛋白沉淀液后，在涡旋振荡器上高速连续振荡混匀25秒。混匀后可能见到一些小的蛋白团块。冰浴5分钟。
  
  • 由于样品体积重量小，用涡旋振荡器振荡混匀产生的剪切力并不会剪切打断基因组DNA。如果用手振荡混匀，则不可以用手上下剧烈振荡混匀，只能适当力度振荡混匀，否则会剪断基因组DNA；但是力度也不能太小，要保证充分混匀，将粘稠的裂解物打散开，否则DNA无法和蛋白质沉淀分离开，离心的时候会和蛋白质一起沉淀下来，造成DNA丢失或者降低产量。此外混匀不充分也可能造成蛋白沉淀不充分，最后的产物污染有较大量的蛋白质。因此建议用涡旋振荡器。
• 13000rpm离心5分钟。这时应该可以见到管底蛋白沉淀，也可能见到一些蛋白沉淀漂浮在液体表面。
  
• 小心缓慢吸取上清到一个新的1.5mL离心管中，不要吸到沉淀。
  
  • 吸取上清时，注意不要吸到管底的和漂浮在液体表面的蛋白沉淀。如果不小心将蛋白沉淀转入新的离心管中，可再次离心2分钟后取上清。
• 加入等体积的室温异丙醇（约600μL），颠倒30次混匀或者直到出现棉絮状（丝状）白色DNA沉淀。
  
  • 颠倒混匀的时候，棉絮状（丝状）DNA有时会粘附着在盖子或者管口处，即使颠倒也不跟下来，这样导致操作者看不到沉淀，误认为没有得到DNA。解决办法是略去步骤9，直接12000rpm离心1分钟，弃上清，然后接步骤11。
• 垂直放置离心管，让白色DNA沉淀自然沉到管底，然后尽可能多的吸弃大部分的上清，注意不要吸到沉淀。
  
  • 如果棉絮状（丝状）DNA沉淀附着有气泡，则会漂浮在液体表面，而不会沉淀下来，要小心避开沉淀吸取上清，不要把沉淀给吸掉了。
• 加入1mL70％乙醇后，颠倒漂洗DNA沉淀，12000rpm离心1分钟，在管底可以见到白色的DNA沉淀块，倒弃上清。
  
• 加入1mL 70％乙醇，颠倒几次漂洗DNA沉淀，12000rpm离心1分钟，倒去上清（注意不要把DNA沉淀倒掉了），倒置后在吸水纸上轻敲几下以控干残留乙醇，还可以用枪头小心吸掉管底沉淀周围和管壁的残留乙醇，空气晾干沉淀几分钟。
  
  • 注意不要干燥过头，否则DNA极其难溶；也不能残留太多乙醇，否则乙醇可能抑制下游如酶切反应。
• 加入100μlDNA溶解液重新水化溶解DNA沉淀，轻弹管壁混匀，可以放置在65℃温育30～60分钟（不要超过一小时），期间不时的轻弹管壁帮助重新水化DNA。也可以在室温或者4℃放置过夜来重新水化DNA。
  
• DNA可以存放在2～8℃，如果要长时间存放，可以放置在-20℃。