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本试剂盒适用于PCR产物的克隆，可将PCR产物连接到pTG-T载体上，便于进行下一步实验。DNA片段连接是经常出问题的步骤，为了提高连接效率，本试剂盒提供了两种连接Buffer供不同情况选择：10×Ligation Buffer Ⅰ适合置于16℃连接过夜，可获得最佳连接效果；2×Ligation Buffer Ⅱ为快速连接Buffer，25℃连接10分钟即可转化，快捷方便。

pTG-T是一种高效克隆PCR产物的专用载体，它是由一种克隆载体在EcoRV酶切位点处切开，在两侧的3′端添加T而成。由于大部分耐热聚合酶反应时都会在PCR产物的3′端添加一个A，可与pTG-T 3′端的T互补连接，因此可大大提高PCR产物的连接和克隆效率。连接使用的PCR片段3′端应带有A末端，如果是使用pfu等高保真聚合酶扩增的不带A末端的片段，应使用平末端连接试剂盒先加A末端后再连接。

试剂盒中配备了高效率的连接试剂、对照用超螺旋质粒和TOP10感受态细胞等，可以方便的连接和转化。带有插入片段的重组子可根据α互补原理，进行蓝白斑筛选，判断载体中有无外源基因的插入（白色克隆为阳性重组克隆，蓝色的为载体自连的克隆，具体筛选原理参考分子克隆等书籍）。克隆后，可使用通用引物T7、SP6进行测序。

TOP10基因型：
F,mcrAΔ（mrr-hsd RMS-mcr BC)φ80,lacZΔM15,Δlac X74,recA1araΔ139 Δ（ara-leu)7697,galUgalK,rps,L （Strr) endA1,nupG

试剂盒组成：

组分	WH0212-1	WH0212-2
pTG-T Vector（50ng/μl）	20μL	60μL
T4 DNA Ligase（3U/μl）	20μL	3×20μL
10×T4 DNA Ligation Buffer	30μL	3×30μL
2×T4 DNA Rapid Ligation Buffer	100μL	3×100μL
Control Insert DNA（700bp）	10μL	10μL
TOP10（100μL each）	10×100μL	30×100μL
Compcell Control Plasmid pUC19	10μL	10μL
ddH2O	1mL	1mL

保存条件：-20℃保存，避免反复冻融（载体和连接试剂可以适当的分装成小份，防止反复冻融，以保证质量）。感受态细胞需要严格的在-70℃冻存。

pTG-T载体图谱

pTG-T载体多克隆位点


注意事项：（请务必在使用本试剂盒之前阅读此注意事项）

• 转化过程中使用对照片段做对照是非常必要的，在实验出现问题时可以确定原因。
  
• 建议留下部分连接产物，在出现问题后能迅速的补救，减少不必要的重复实验。
  
• 涂布用量可根据具体实验作相应调整。如转化的DNA总量较多，可取更少量转化产物涂布平板；反之，如转化的DNA总量较少，可取200～300μL转化产物涂布平板。如果预计的克隆较少，可通过离心（4000rpm，2min）后吸除部分培养液，留下适量的培养基悬浮菌体后将其涂布于一个平板中（涂布剩余的菌液可置于4℃保存，如果次日的转化菌落数过少可以将剩下的菌液再涂布新的培养板）。

操作步骤：

• 将载体在冰上融化（尽可能避免反复冻融载体，在初次使用时最好分装成小份，每次使用时取出一份），短暂离心装有载体的离心管，以免液体挂在管壁上。
  
• 按照下表的内容在无菌的离心管中加入各种成分，载体与片段的摩尔比控制在1:3-1:8，请根据凝胶电泳或紫外分光光度计检测后的浓度及载体与片段分子大小来计算其摩尔比。加入过多的片段反而会干扰连接反应:
  
  10×T4 DNA Ligation Buffer：
  

  成分	用量
  10×T4 DNA Ligation Buffer	1μL
  T4 DNA Ligase（3U/μl）	1μL
  pTG-T载体（50ng/μl）	1μL
  目的PCR片段/对照/Control Insert DNA	X/1μL
  ddH2O	补水到10μL

  
  
  2×T4 DNA Rapid Ligation Buffer：
  

  成分	用量
  2×T4 DNA Rapid Ligation Buffer	5μL
  T4 DNA Ligase（3U/μl）	1μL
  pTG-T载体（50ng/μl）	1μL
  目的PCR片段/对照/Control Insert DNA	X/1μL
  ddH2O	补水到10μL

  
  本试剂盒提供10×T4 DNA Ligation和2×T4 DNA Rapid Ligation两种buffer，切勿将两者加入到同一离心管中。
  
  
• 轻轻弹动离心管以混合内容物，短暂离心。如果选择10×T4 DNA Ligation Buffer，请将混合反应液置于22～26℃水浴反应1-2h（如室温在此范围内，可置于室温放置1-2h）或16℃过夜；如果选择2×T4 DNA Rapid Ligation Buffer，请将混合反应液置于22～26℃反应5～10min（反应时间不要超过15min，否则会降低连接效率）。反应结束后，将离心管置于冰上。
  注意：我们推荐您使用10×T4 DNA Ligation Buffer，16℃过夜连接。
  
  
• 转化
  
  • 转化平板的制备
    向铺好的含有相应抗生素的固体琼脂平板表面加入16μL的IPTG（50mg/ml）、40μL的X-Gal（20mg/ml），使用无菌的弯头玻璃棒将其均匀的涂开，避光置于37℃放置1-3h，使溶解X-Gal的二甲基甲酰胺尽量挥发干净。
    
  • 转化
    ①取部分连接产物加到50～100μL TOP10感受态细胞中（感受态细胞应刚从-70℃冰箱取出放于冰浴上，待刚刚解冻时加入连接产物，连接产物的加入量不超过感受态细胞体积的十分之一），轻弹混匀，冰浴30min（必要时请使用超螺旋质粒pUC19同步转化感受态细胞作为对照检测转化效率，将1μL pUC19加入另一只感受态细胞管中，其余的操作步骤与连接产物的转化步骤同步进行）。
    ②将离心管置于42℃水浴90sec，取出管后立即置于冰浴中放置2～3min，其间不要摇动离心管。
    ③向离心管中加入250～500μL 37℃预热的SOC或LB（不含抗生素）培养基，150rpm、37℃振荡培养45min。目的是使质粒上相关的抗性标记基因表达，使菌体复苏。
    ④将离心管中的菌液混匀，吸取100μL加到含相应抗生素的SOB或LB固体琼脂培养基上，用无菌的弯头玻棒轻轻的将细胞均匀涂开。待平板表面干燥后，倒置平板，37℃培养12-16h。
    
  
  
• 检测
  
  • 常规检测：将得到的白色菌落接种1～5mL LB（含有终浓度为50～100μg/ml的氨苄青霉素）培养基，37℃摇床振荡培养过夜，保存菌种后提取质粒，应用PCR或酶切方法鉴定插入片段是否正确。
    
  • 快速检测：挑取白色菌落直接进行PCR检测（具体方法见分子克隆第三版）。
    
  • 测序鉴定：使用常规或快速方法进行初步的鉴定后进行序列的测定。
  
  相关搜索：pTG-T载体克隆试剂盒(含感受态细胞)，T载体克隆试剂盒