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本制品是采用大肠杆菌DH5α菌株经特殊工艺处理得到的感受态细胞，可用于DNA的化学转化。使用pUC19质粒检测，转化效率可达10⁸cfu/ug，-70℃保存几个月转化效率不发生改变。每支感受态可以酌情分装使用，降低了实验的成本。质量稳定，使用方便，质优价廉。

该菌株一种常用于质粒克隆的菌株。其φ80lacZ△M15基因的产物可与pUC载体编码的β-半乳糖苷酶氨基端实现α互补，可用于蓝白斑筛选。recA1和endA1的突变有利于克隆DNA的稳定和高纯度质粒DNA的提取。

基因型：


保存条件：-70℃冻存，有效期6个月。

操作步骤：（以下操作均按无菌条件的标准进行）
1．取感受态细胞置于冰浴中，如需分装可将刚融化细胞悬液分装到无菌预冷的离心管中，置于冰浴中。
  注意：一次转化感受态细胞的建议用量为50-100μl，可以根据实际情况分装使用。应注意所用DNA体积不要超过感受态细胞悬液体积的十分之一。以下实验以100μl感受态细胞为例。
2．向感受态细胞悬液中加入目的DNA（100μl的感受态细胞能够被1ng超螺旋质粒DNA所饱和)，轻弹混匀，在冰浴中静置30min。
3．将离心管置于42℃水浴中放置60-90sec，然后快速将管转移到冰浴中，使细胞冷却2-3 min，该过程不要摇动离心管。
  注意：此步骤也可将离心管置于室温进行，时间不需十分准确，夏季或室温较高时，可放置5-8 min左右，如果室温较低，可延长时间至8-15 min左右。条件允许建议使用42℃热激方法。
4．向每个离心管中加入900 μl无菌的SOC或LB培养基（不含抗生素），混匀后置于37℃摇床振荡培养45min （150rpm)，目的是使质粒上相关的抗性标记基因表达，使菌体复苏。
5．将离心管内容物混匀，吸取100μl已转化的感受态细胞加到含相应抗生素的SOB或LB固体琼脂培养基上，用无菌的弯头玻棒轻轻的将细胞均匀涂开。将平板置于室温直至液体被吸收，倒置平板，37℃培养12-16h。
  注意：涂布用量可根据具体实验来调整。如转化的DNA总量较多，可取更少量转化产物涂布平板；反之，如转化的DNA总量较少，可取200-300 μl转化产物涂布平板。如果预计的克隆较少，可通过离心（4000 rpm,2 min）后吸除部分培养液，悬浮菌体后将其涂布于一个平板中。（涂布剩余的菌液可置于4℃保存，如果次日的转化菌落数过少可以将剩下的菌液再涂布新的培养板）

注意事项：
1．感受态细胞应保存在-70℃，不可冻融和放置时间过长，以避免降低感受态细胞的转化效率。
2．进行转化操作时，应根据相应温度及无菌条件的要求进行。
3．为防止转化实验不成功，可以保留部分连接反应液，以重新转化，将损失降到最低。
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