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HgLipo脂质体高效转染试剂是一种新型的阳离子脂质体转染试剂。适合于将核酸（DNA和RNA）转染入真核细胞，具有低细胞毒性；对多种类型的细胞和培养板都具有高转染效率；转染时血清的存在不影响转染效率的优点。

• 影响转染效率的因素有很多，如细胞类型、细胞状态及密度、DNA转染量、转染试剂与DNA比例等，应该在具体实践中优化来确定最佳转染条件。
  
• 细胞：为了取得较高的转染效率，推荐使用在50代以内的细胞进行转染。
  
• DNA的质量：为了取得较高的转染效率，推荐使用高纯度的质粒，OD260/OD280≥1.8。
  
• 对大多数细胞来说，质粒DNA(μg)与HgLipo(μl)的比例为1:2～1:3。

• 准备细胞（24孔板为例）：
  
  • 贴壁细胞：转染前18～24小时，用500μL不含抗生素的培养基接种0.5～2×10⁵个细胞于24孔板中，并将细胞培养板置于37℃，5% CO₂培养箱培养，转染前细胞密度达到70～90%为理想状态（具体密度视细胞的不同可进行适当调整）。
    
  • 悬浮细胞：在准备转染前，用500μL不含抗生素的培养基接种4～8×10⁵个细胞即可。
• 准备转染工作液：
  
  • 将0.8～1μg质粒DNA溶于50μL细胞培养基中，轻轻混匀，室温静置5min；
    
  • 将2～3μL的HgLipo溶于50μL细胞培养基中，轻轻混匀，室温静置5min；
    
  • 将上步含有HgLipo的培养基加入含有质粒DNA的培养基中，轻轻混匀，室温静置20min；
• 将上述转染混合液，逐滴滴入接种好的细胞中，轻轻混匀后置于37℃，5% CO₂培养箱中进行培养；
  
• 4～8小时后，更换新鲜培养基继续培养；
  
• 转染24～48小时后，观察或收取细胞。如果筛选稳定细胞株，则在转染24小时后将细胞按照1:10或更高的比例接种到新鲜培养基中，S第二天加入选择培养基筛选。